| 中文名称: | 糖原PAS染色液 一键复制产品信息 | ||||
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产品简介：
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus 在 1946 年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋 白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性 物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧 化剂，它能氧化糖类及有关物质中的 1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff 试剂能结合成一 种品红化合物，产生紫红色;由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在既能把乙二醇基氧化成醛基又不至于过氧化，这是很关键的步骤。
糖原 PAS 染色液(培养细胞专用)专门用于培养细胞的染色，是采用普西唐特有配方技术，大大增强 了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需 1h ;过碘酸、苏木素浓度更低，更适用于细胞、 超薄组织切片染色；无盐酸乙醇分化步骤。该试剂适用于科研领域，不适用于临床诊断。
糖原 PAS 染色液(培养细胞专用)专门用于培养细胞的染色，是采用普西唐特有配方技术，大大增强 了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需 1h ;过碘酸、苏木素浓度更低，更适用于细胞、 超薄组织切片染色；无盐酸乙醇分化步骤。该试剂适用于科研领域，不适用于临床诊断。
操作步骤：
以六孔板培养的细胞为例:
1.细胞准备:
①将培养好的六孔板细胞用 PBS 磷酸盐缓冲液(可用普西唐PS0280 磷酸缓冲盐溶液(1xPBS,无钙镁)，轻轻冲洗 2-3 次，以去除培养基中的血清等杂质
②吸去 PBS，确保孔内没有残留液体，但要注意避免吸力过大损伤细胞。
2.固定细胞:
①向六孔板每个孔中加入适量的固定液(可用组织细胞固定液(4%PFA)，固定液用量以覆盖细胞为宜。
②将六孔板放入 4℃冰箱固定 30~60 分钟，具体时间可根据细胞类型和实验要求调整。
③固定完成后，吸去固定液，PBS 冲洗细胞 2~3 次，每次 3~5 分钟，去除残留固定液。
3.氧化:
①向每个孔中加入适量的过碘酸溶液，用量以覆盖细胞为准。
②将六孔板置于室温下避光孵育 15~30 分钟
③孵育结束后，吸去过碘酸溶液，用 PBS 冲洗细胞 2~3 次，每次 3~5 分钟。
4.染色:
①向每个孔中加入适量的 Schiff 试剂，用量以覆盖细胞为准。
②将六孔板置于室温下避光孵育 20~30 分钟。
③染色结束后，吸去染色液，PBS 冲洗细胞 2~3 次，每次 3~5 分钟，直至冲洗液无色。
5.苏木素复染:
①向每个孔中加入适量的 Mayer 苏木素染色液，室温下孵育 3~5 分钟。
②染色结束后，用 PBS 洗涤细胞，去除多余的染液。再用去离子水反蓝 5~10 分钟。
③用 PBS 冲洗细胞 2~3 次，每次 3~5 分钟，去除残留的苏木素染色液。
6.封片与观察:
①吸去 PBS，在六孔板细胞上滴加适量的封片剂，然后用盖玻片轻轻覆盖细胞，尽量避免产生气泡。
②将六孔板置于显微镜下观察，糖原呈紫红色，细胞核呈蓝色。
1.细胞准备:
①将培养好的六孔板细胞用 PBS 磷酸盐缓冲液(可用普西唐PS0280 磷酸缓冲盐溶液(1xPBS,无钙镁)，轻轻冲洗 2-3 次，以去除培养基中的血清等杂质
②吸去 PBS，确保孔内没有残留液体，但要注意避免吸力过大损伤细胞。
2.固定细胞:
①向六孔板每个孔中加入适量的固定液(可用组织细胞固定液(4%PFA)，固定液用量以覆盖细胞为宜。
②将六孔板放入 4℃冰箱固定 30~60 分钟，具体时间可根据细胞类型和实验要求调整。
③固定完成后，吸去固定液，PBS 冲洗细胞 2~3 次，每次 3~5 分钟，去除残留固定液。
3.氧化:
①向每个孔中加入适量的过碘酸溶液，用量以覆盖细胞为准。
②将六孔板置于室温下避光孵育 15~30 分钟
③孵育结束后，吸去过碘酸溶液，用 PBS 冲洗细胞 2~3 次，每次 3~5 分钟。
4.染色:
①向每个孔中加入适量的 Schiff 试剂，用量以覆盖细胞为准。
②将六孔板置于室温下避光孵育 20~30 分钟。
③染色结束后，吸去染色液，PBS 冲洗细胞 2~3 次，每次 3~5 分钟，直至冲洗液无色。
5.苏木素复染:
①向每个孔中加入适量的 Mayer 苏木素染色液，室温下孵育 3~5 分钟。
②染色结束后，用 PBS 洗涤细胞，去除多余的染液。再用去离子水反蓝 5~10 分钟。
③用 PBS 冲洗细胞 2~3 次，每次 3~5 分钟，去除残留的苏木素染色液。
6.封片与观察:
①吸去 PBS，在六孔板细胞上滴加适量的封片剂，然后用盖玻片轻轻覆盖细胞，尽量避免产生气泡。
②将六孔板置于显微镜下观察，糖原呈紫红色，细胞核呈蓝色。
自备材料：
1.蒸馏水、1xPBS、4% PFA、系列乙醇、二甲苯或环保浸蜡脱蜡透明液、中性树胶
组分：
| 产品名称 |
规格 4×20ml |
Storage |
| 试剂(A):PAS 固定液 | 50ml | 4℃ 避光 |
| 试剂(B):过碘酸溶液 | 20ml | 4℃ 避光 |
| 试剂(C):Schiff Reagent | 20ml | 4℃ 避光 |
| 试剂(D):Mayer 苏木素染色液 | 50ml | 4℃ 避光 |
染色结果：
| PAS 反应阳性物质(糖原或多糖) | 红色或紫红色 |
| 细胞核 | 蓝色 |
| 细胞质 | 深浅不一的红色 |
常见问题：
阴阳对照（可选）：
1.取淀粉酶 1g 溶解于 PBS(pH5.3)100ml，处理 30~60min，与其他样本共同入过碘酸溶液，结果应为阴性。
2.(备选方案)取唾液片(过滤后用)处理 30~60min，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性
3.(备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入 Schiff试剂，结果应为阴性。
1.取淀粉酶 1g 溶解于 PBS(pH5.3)100ml，处理 30~60min，与其他样本共同入过碘酸溶液，结果应为阴性。
2.(备选方案)取唾液片(过滤后用)处理 30~60min，与其他样本共同入过碘酸溶液。结果应为阴性
3.(备选方案)如果对照片采用其自身样本，对照片不经过碘酸溶液这一步，直接入 Schiff试剂，结果应为阴性。
保存条件：
12个月有效。低温运输，按要求保存。
注意事项：
1、过碘酸和 Schiff 试剂中作用时间非常重要，时间过长或过短都会影响染色效果。例如氧化时间过长可能导致细胞结构受损，染色时间不足则糖原着色不明显。
2、过碘酸溶液、Schiff 试剂、苏木素染色液应置于 4℃密闭保存，使用时避免接触过多的2、阳光和空气，使用前最好提前 30min 取出恢复至室温，避光暗处使用。
3、染色前要确保细胞状态良好，生长旺盛且无明显的病变或死亡细胞。如果细胞状态不佳3、可能会影响染色结果的准确性。
4、六孔板中的细胞密度要适中，不宜过高或过低。细胞密度过高会导致细胞重叠，影响观察;细胞密度过低则可能难以观察到明显的染色效果。
5、该试剂常用于细胞，如果需要切片染色建议采购普西唐-糖原 PAS 染色液.
6、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
7、试剂开封后请尽快使用，以防影响后续实验效果。
2、过碘酸溶液、Schiff 试剂、苏木素染色液应置于 4℃密闭保存，使用时避免接触过多的2、阳光和空气，使用前最好提前 30min 取出恢复至室温，避光暗处使用。
3、染色前要确保细胞状态良好，生长旺盛且无明显的病变或死亡细胞。如果细胞状态不佳3、可能会影响染色结果的准确性。
4、六孔板中的细胞密度要适中，不宜过高或过低。细胞密度过高会导致细胞重叠，影响观察;细胞密度过低则可能难以观察到明显的染色效果。
5、该试剂常用于细胞，如果需要切片染色建议采购普西唐-糖原 PAS 染色液.
6、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
7、试剂开封后请尽快使用，以防影响后续实验效果。
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
