( 母液浓度为 40 mg/mL ), 如您需要配置的浓度超过该产品的溶解度,请先与我们客服联系。| 中文名称: | 复杂多糖多酚植物/真菌基因组DNA快速提取试剂盒 一键复制产品信息 | ||||
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| 英文名称: | |||||
| 别名: | 复杂多糖多酚植物/真菌基因组DNA快速提取试剂盒 | ||||
| CAS No: | |||||
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本产品适用于提取各种复杂多糖多酚淀粉类植物和复杂真菌基因组DNA等。
取600 µl裂解液PF至离心管内(如果PF气温低有析出或者沉淀需先置于65°C水浴重新溶解),在600 µl裂解液PF中加入12 μl β-巯基乙醇( β-巯基乙醇的终浓度约为2%)。颠倒混匀后65°C水浴中预热。多个样品按照比例放大准备。
1:取适量植物组织(新鲜组织100 mg 或干重组织30 mg,可适当多取一些样品弥补粘在研钵上的损失)在研钵中加入液氮充分碾磨成细粉。
2:将研磨好的粉末迅速转移到预先装有600 µl 65°C预热裂解液PF的离心管中(确认裂解液PF中已经加入了β-巯基乙醇),迅速颠倒混匀后,加入5 μl RNase A(10 mg/ml),将离心管放在65°C水浴20-30 min,水浴过程中颠倒离心管以混合样品数次。
如果组织干燥或者产量低,可以适当延长水浴时间至1 h。
如果提取的DNA残留RNA较多导致电泳时候条带拖尾,条带扭曲,背景很高等不正常电泳情况,可以加1% RNase A(10 mg/ml),37°C或者室温放置20 min即可消化RNA,消化完后不需要特殊处理便可直接用于PCR或者酶切。
3:加入700 µl氯仿,充分混匀,13, 000 rpm 离心5 min。
可选步骤(一般不需要):若提取富含多糖多酚或淀粉植物,可在第3步前,用Tris饱和酚(PH8.0)/氯仿(1:1)等体积抽提一遍。
如果没有氯仿,可以购24:1(PS1168)。
4:小心吸取上清(约600 µl)到一个新的离心管。加入1.5倍体积结合液PQ(请先检查是否已加入无水乙醇!)后立刻涡旋,充分混匀。
5:将混匀的液体转入吸附柱AC中,13,000 rpm 离心30 sec,弃掉废液。(吸附柱容积为700 µl左右,可分次加入离心。)
6:加入500 μl去蛋白液PE(请先检查是否已加入无水乙醇!),13,000 rpm离心30 sec,弃废液。
7:加入600 μl漂洗液WB(请先检查是否已加入无水乙醇!),13,000 rpm离心30 sec,弃掉废液。
8:重复操作步骤7。
9:将吸附柱AC放回空收集管中,13,000 rpm离心2分钟。尽量除去漂洗液,以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
10:取出吸附柱AC,放入一个干净的离心管中,在吸附膜的中间部位加50-100 μl洗脱缓冲液EB,室温放置3分钟,13,000 rpm 离心1 min。将得到的溶液重新加入离心吸附柱中,室温放置2 min,13, 000 rpm离心1 min。
洗脱体积越大,洗脱效率越高,如果需要DNA浓度较高,可以适当减少洗脱体积, 但是需注意体积过小降低洗脱效率,减少DNA产量(最小不应少于30 µl)。
如追求最高产量,洗脱缓冲液事先在 80-100°C水浴中预热后再加可以提高产量。
附录(低DNA含量或者产量低样品操作步骤):
1:取适量植物组织(新鲜组织500 mg 或干重组织200 mg)在研钵中加入液氮充分碾磨成细粉。
2:转移细粉到一个15 ml离心管,不要解冻,加入9 ml 65°C预热的裂解液PF (确认已经加入β-巯基乙醇至终浓度2%),剧烈涡旋振荡混匀,用大口径枪头吹打帮助裂解。
如果组织裂解困难,可根据需要加一个轻柔匀浆10秒的步骤帮助裂解。
3:室温放置1h,中间不时颠倒离心管以混合样品数次。
如果组织干燥或者产量低,可以放置在65°C水浴。
4:加4.5 ml氯仿,涡旋充分混匀,3,000×g 离心10 min。
5:小心吸取上清到一个新的15ml离心管,注意不要吸到界面物质。重复一遍步骤4。
6:小心吸取上清到一个新的15 ml离心管,估算上清量,加入0.7倍体积的异丙醇,涡旋混匀来沉淀DNA。
7:立刻3,000 ×g 离心20 min沉淀DNA,弃上清,颠倒离心管口放在纸巾上控干残留液体,并小心用用移液器吸干沉淀周围残留液体(不要过于干燥DNA沉淀)。
8:加入300 μl-400 μl预热到65°C的灭菌水和3 μl RNA酶,重新溶解DNA,可能需要在65°C短暂温育帮助溶解,期间不断轻弹管底帮助溶解。
9:加入1.5倍体积结合液PQ(450μl-600μl,请先检查是否已加入无水乙醇!)后立刻涡旋,充分混匀。
10:后续步骤和上面标准操作步骤5开始后完全一样。
2:适用极其广泛,可以高质量提取绝大多数样品包括最复杂的多糖多酚,淀粉种子类样品。
3:操作简捷,单个样品操作一般可在30分钟完成。
4:数种去多糖、多酚成份和多次柱漂洗确保高纯度,OD260/OD280典型的比值达1.7~1.9,长度可达20 kb-50kb,可直接用于PCR,Southern-blot和各种酶切反应。
| 试剂盒组成 | 50T | 100T | 保存 |
| RNase A | 250 μL | 500 μL | 4°C |
| 裂解液PF | 30 mL | 60 mL | 室温 |
| 结合液PQ | 18 mL(第一次使用前加入36ml的无水乙醇) | 35 mL(第一次使用前加入70ml的无水乙醇) | 室温 |
| 去蛋白液PE | 16 mL(第一次使用前加入10ml的无水乙醇) | 32 mL(第一次使用前加入20ml的无水乙醇) | 室温 |
| 漂洗液WB | 13 mL(第一次使用前加入52ml的无水乙醇) | 25 mL(第一次使用前加入100ml的无水乙醇) | 室温 |
| 洗脱缓冲液EB | 10 mL | 10 mL | 室温 |
| 吸附柱AC | 50个 | 100个 | 室温 |
| 收集管 | 50个 | 100个 | 室温 |
2:裂解液PF冬天低温时可能出现析出和沉淀,可以在55°C水浴几分钟帮助重新溶解,恢复澄清透明后轻轻充分混匀冷却到室温即可使用。
3:避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH值变化,各溶液使用后应及时盖紧盖子。
2:开始实验前将需要的水浴先预热到65°C备用。
3:需要自备氯仿、无水乙醇和β-巯基乙醇。
4:不同来源的植物组织材料中提取DNA 的量会有差异,一般100 mg新鲜组织典型产量可达3-25μg。
5:洗脱液EB不含有螯合剂EDTA, 不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗脱, 但应该确保pH大于7.5, pH过低影响洗脱效率。用水洗脱DNA应该保存在-20°C。DNA如果需要长期保存,可以用TE缓冲液洗脱(10 mM Tris-HCl,1 mM EDTA,pH 8.0),但是EDTA可能影响下游酶切反应,使用时可以适当稀释。
6:本试剂盒是按照标准提取过程配置各溶液体积,如果样品DNA含量低或者产量低,需要扩大提取量,还需要另外购买溶液。
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系,公式为:
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液,使用的计算公式为:
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为:C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
母液,添加 300 μLPEG300
混匀澄清,再加 50μLTween80, 混匀澄清,再加 600μLSaline/PBS/ddH2O
混匀澄清方案所需的各种助溶剂如: DMSO , PEG300 / PEG400 , Tween 80 , SBE-β-CD , 玉米油 等, 均可点击跳转或在网站搜索购买。
计算结果:
工作液浓度: mg/ml;
DMSO母液配制方法: mg 药物溶于 μL DMSO溶液(母液浓度 mg/mL,
体内配方配制方法:取 μL DMSO母液,加入 μL PEG300,混匀澄清后加入μL Tween 80,混匀澄清后加入 μL Saline/PBS/ddH2O,混匀澄清。
1. 首先保证母液是澄清的;
2.
一定要按照顺序依次将溶剂加入,进行下一步操作之前必须保证上一步操作得到的是澄清的溶液,可采用涡旋、超声或水浴加热等物理方法助溶。
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