产品简介
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糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该技术不仅能显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。 糖原PAS染色液(培养细胞专用)专门用于培养细胞的染色，是采用普西唐特有配方技术，大大增强了染色效果；性能稳定，特异性强；操作简捷，仅需1h;过碘酸、苏木素浓度更低，更适用于细胞、超薄组织切片染色；无盐酸乙醇分化步骤。该试剂适用于科研领域，不适用于临床诊断。 |
组成：
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产品名称 |
规格 5×20ml |
规格 5×50ml |
Storage |
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试剂(A):PAS固定液 |
50ml |
100ml |
RT 避光 |
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试剂(B):过碘酸溶液 |
20ml |
50ml |
4℃ 避光 |
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试剂(C):Schiff Reagent |
20ml |
50ml |
4℃ 避光 |
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试剂(D):亚硫酸钠溶液 |
20ml |
50ml |
RT 密闭 |
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试剂(E):Mayer苏木素染色液 |
20ml |
50ml |
4℃ 避光 |
操作步骤(仅供参考)：
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1、培养细胞用PAS固定液固定。 |
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2、水洗、晾干。 |
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3、入过碘酸溶液室温氧化。 |
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4、自来水冲洗2次，蒸馏水浸洗2次。 |
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5、入Schiff Reagent并加盖，置于室温阴暗处浸染。 |
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6、亚硫酸钠溶液滴洗2次，每次，该步骤亦可省略。 |
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7、流水冲洗2min。 |
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8、入Mayer苏木素染色液复染。水洗、晾干、镜检。 |
染色结果：
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PAS反应阳性物质(糖原或多糖) |
红色或紫红色 |
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细胞核 |
蓝色 |
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细胞质 |
深浅不一的红色 |
备注：
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颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和Schiff Reagent中作用时间的长短。 |
注意事项：
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1、过碘酸氧化时间不宜过久，氧化时的温度以18～22℃最佳。 |
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2、过碘酸溶液、Schiff Reagent、苏木素染色液应置于4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气，使用前最好提前30min取出恢复至室温，避光暗处使用。 |
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3、过碘酸和Schiff中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、细胞或组织的类别等决定。4、本试剂常用于细胞、极其薄的切片，如果常规切片建议采购糖原PAS染色液。 |
有效期：12个月有效。
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质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
