中文名称: 糖原PAS染色液
英文名称:
CAS No:
分子式:
分子量:
PS0428 糖原PAS染色液 (psaitong)
产品简介:
糖原染色是病理学中常规的染色方法之一,McManus在1946 年最先使用高碘酸- 雪夫技术显示黏蛋白,该法常用来显示糖原和其他多糖,该染色液不仅能够显示糖原,还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质,以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。
过碘酸(又称高碘酸)是一种强氧化剂,它能氧化糖类及有关物质中的 1,2-乙二醇基,使之变为二醛,醛与 Schiff 试剂能结合成一种品红化合物,产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质,使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间,使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基,又不至于过氧化,这是很关键的步骤。
本糖原 PAS 染色液的特点:采用特有配方技术,大大增强了染色效果;性能稳定,特异性强;操作简捷,仅需1小时左右。
操作步骤:
1、常规固定,常采用 10%的福尔马林,常规脱水包埋。
2、石蜡切片脱蜡入蒸馏水;冰冻切片直接入蒸馏水。
3、自来水冲洗 2~3min,再用蒸馏水浸洗 2 次。
4、置于过碘酸溶液中,室温放置 5~8min,一般不宜超过 10min。
5、自来水冲洗 1 次,再用蒸馏水浸洗 2 次。
6、样本放入 SchiffReagent,置于室温阴暗处,浸染 10~20min。
7、自来水冲洗 10min。
8、样本置于苏木素染色液中,染细胞核 1~2min。
9、酸性乙醇分化液分化 2~5s。
10、自来水冲洗 10~15min 后,更换双蒸水清洗,使其返蓝。
11、逐级常规乙醇脱水。二甲苯透明,中性树胶封固。

阴性对照(可选):
1、对照切片可以用唾液,取唾液片(过滤后用)处理 30~60min 后,与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
2、对照片可以淀粉酶,取淀粉酶 1g 于双蒸水或 PBS(pH5.3)100ml,处理 30~60min后,与其他切片共同入过碘酸溶液。结果应为阴性。
3、如果对照片采用其自身样本,对照片不经过碘酸溶液这一步,直接入SchiffReagent。染色结果:对照片呈阴性反应,无紫红色颗粒。
自备材料:
1、10%福尔马林固定液
2、蒸馏水
3、乙醇
组分:
产品名称 规格
4×50mL
规格
4×100mL
储存
试剂(A)过碘酸溶液 50mL 100mL 4℃,避光
试剂(B)SchiffReagent 50mL 100mL 4℃,避光
试剂(C)苏木素染色液 50mL 100mL RT
试剂(D)酸性乙醇分化液 50mL 100mL RT
染色结果:
PAS 反应阳性物质:红色或紫红色
细胞核:蓝色
细胞质:深浅不一的红色
备注:颜色深浅很大程度上取决于样品在过碘酸溶液和 SchiffReagent 中作用时间的长短。
注意事项:
1、切片脱蜡应尽量干净,否则影响染色效果。
2、过碘酸氧化时间不宜过久,氧化时的温度以 18~22℃最佳。
3、过碘酸溶液和 SchiffReagent 应置于 4℃密闭保存,使用时避免接触过多的阳光和空气。使用前,最好提前30min取出恢复到在室温后,避光暗处使用。
4、酸性乙醇分化液应经常更换新液,其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性乙醇分化液的新旧而定,另外分化后自来水冲洗时间应该足够。
5、在过碘酸溶液和 SchiffReagent 中作用时间非常重要,该依据切片厚薄、组织的类别等决定。
6、本染色液常用于常规组织切片染色,对于真菌、细胞、极其薄的切片,建议采购糖原 PAS 染色试剂盒(细胞真菌专用),因为其过碘酸溶液和苏木素溶液浓度更低,不宜过染。
7、冷冻切片染色时间尽量要短。
8、为了您的安全和健康,请穿实验服并戴一次性手套操作。
保存条件:
4℃,避光,6个月
UN码:
HazardClass:
危害声明:
安全说明:
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献

本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系,公式为:
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)

摩尔浓度计算公式

  • =
    *
    *
    *选择对应的单位 *空出希望得到的变量,填写另外两个变量

用本工具协助配置特定浓度的溶液,使用的计算公式为:
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积

稀释公式

稀释公式一般简略地表示为:C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )

  • * = *

连续稀释计算器方程

  • 连续稀释

  • 初始浓度:
  • 稀释倍数:
  • 计算结果

  • C1=C0/X C1: LOG(C1):
    C2=C1/X C2: LOG(C2):
    C3=C2/X C3: LOG(C3):
    C4=C3/X C4: LOG(C4):
    C5=C4/X C5: LOG(C5):
    C6=C5/X C6: LOG(C6):
    C7=C6/X C7: LOG(C7):
    C8=C7/X C8: LOG(C8):