包装规格：
500uL in glass bottle
产品简介：
一种具有凝胶染色特性，并可替换高毒性染色剂溴化乙锭(EB)的红色荧光核酸染色剂。Gelred与EB有着相同的光谱特性，可以在不改变任何成像系统的情况下用来替换EB。本产品为10000X in H2O为浓缩的 GelRed 溶液。使用时，可稀释10,000倍后使用。
操作步骤：
一：胶染法（预染法，⽤法EB完全相同）
制胶时加⼊染料Red(染料灵敏，每100mL琼脂糖溶液中加⼊10μL 原装液即可)。 按常规⽅法电泳。
1：实验室材料和试剂
a:实验样品：质粒DNA，DNA marker（国产的DNA marker 浓度太⾼，⾄少稀释 2-3 倍后使⽤）。
b：TBE 缓冲：10X TBE 电泳缓冲液⽤ ddH2O 稀释 10 倍配制 1X TBE 电泳缓冲液。
c：TAE 缓冲液：稀释50倍配制1X TAE电泳缓冲液。
d：溴酚蓝指示剂，1%的琼脂糖凝胶，电泳仪（130v），移液器(0.5-10ul)，凝胶成像仪
2：实验步骤
a:制胶：将 0.5g 琼脂糖溶于 50mL 1X TBE 电泳缓冲液中，加热⾄琼脂糖完全融化。将融好的琼脂糖溶液室温放置 50℃左右加⼊ 5uL 的染料Red凝胶电泳染料，摇匀。
b：倒胶：将制好的琼脂糖凝胶缓慢倒于制胶托盘内，避免产⽣⽓泡。将点样梳⼦垂直置于电泳胶膜的⼀端，距离托盘底部约1mm。放置时尽量保持平稳，切勿晃动。
c：置胶：待约 30 分钟左右胶体充分凝固后，缓慢垂直向上拔起点样梳⼦，切勿用力过猛。（夏季适当延长凝胶时间）
d：将琼脂糖凝胶放⼊电泳槽内，加⼊电泳缓冲液，使电泳缓冲液液⾯⾼于凝胶⾯约 1-2mm。
e：将混合溴酚蓝指示剂的 DNA 样本（1ul 溴酚蓝与 2ul DNA 标本混合）加⼊到点样孔内。
f：盖上电泳槽盖，开启电源，使 DNA 从负极移向正极恒压电泳(电压恒定在 120-130v 之间，⼀般可选择 130V)。
g：DNA条带距离点样孔约1-2cm 后关闭电源，(约 30-40 分钟)取出凝胶。
h：用302nm 激发的UV凝胶成像系统观察结果。
*此方法染色染料用量相对较少。染料加入胶中可直接使用微波炉加热，制好的胶溶液可以在室温下保存直至用完。
*此胶染法(预染法)不适合预制聚丙烯酰胺凝胶，对于聚丙烯酰胺凝胶请使用泡染法(后染法)。
二：泡染法(后染法)
1：按照以上常规⽅法进⾏电泳。 用于胶回收等高浓度DNA样品强烈推荐泡染法！
2：将染料Red 10,000×储液稀释约10000倍到0.1M NaCl溶液中制成1×染色液。（例如将5μL 染料Red10,000×原装液加入到50mL 0.1M NaCl溶液中）。
3：将凝胶小心地放⼊合适的容器中（如聚丙烯容器中）缓慢加入足量的1×染⾊液浸没凝胶。室温振荡染色30min左右，最佳染⾊时间根据凝胶厚度以及琼脂糖浓度不同略有不同。对于含1％的凝胶，染色时间约30min。
4：用302nm激发的紫外凝胶成像系统观察结果。
*泡染出现的条带弯曲和拖带的现象与样品的质量和凝胶的浓度有关，并不是染料的问题！泡染比预染适当提高琼脂糖凝胶浓度约0.2%-0.3%。
*用泡染法染色时，染料用量较多。1×染料染色液室温避光保存，可重复使用3次左右。
三：核酸电泳的PAGE步骤
1：将TBE制备的凝胶放⼊电泳槽中，⽤夹⼦夹住边缘。
2：⽤配置凝胶溶液同⼀批次的5×TBE灌满缓冲液槽。⽤注射器排除凝胶底部的⽓泡。
3：⽤注射器吸取1×TBE冲洗加样孔。将DNA样品和适量的6×凝胶上样缓冲液混合，⽤微量移液管加⼊加样孔。
4：将电极与电源相连（正极接下槽），打开电源⼀般90V；1-8V/cm。进⾏电泳9h。
5：电泳⾄标准参照染料迁移⾄所需位置（⼀般是电泳到⼆甲苯完全迁出，溴酚蓝距底边2-3cm停⽌）。关闭电源，拔掉插头，弃去电泳槽中的电泳液
6：将凝胶取下来放⼊，染⾊⽫中，加3X 染料Red的1X缓冲液中的振荡染⾊30-60分，放置在紫外检测即可。
*注意事项：PAGE不能用预染或点染的方法；只能用泡染的方法显色，由于聚丙烯酰胺比较致密，染料不容易深入，显色效果没有琼酯糖凝胶好。
制胶时加⼊染料Red(染料灵敏，每100mL琼脂糖溶液中加⼊10μL 原装液即可)。 按常规⽅法电泳。
1：实验室材料和试剂
a:实验样品：质粒DNA，DNA marker（国产的DNA marker 浓度太⾼，⾄少稀释 2-3 倍后使⽤）。
b：TBE 缓冲：10X TBE 电泳缓冲液⽤ ddH2O 稀释 10 倍配制 1X TBE 电泳缓冲液。
c：TAE 缓冲液：稀释50倍配制1X TAE电泳缓冲液。
d：溴酚蓝指示剂，1%的琼脂糖凝胶，电泳仪（130v），移液器(0.5-10ul)，凝胶成像仪
2：实验步骤
a:制胶：将 0.5g 琼脂糖溶于 50mL 1X TBE 电泳缓冲液中，加热⾄琼脂糖完全融化。将融好的琼脂糖溶液室温放置 50℃左右加⼊ 5uL 的染料Red凝胶电泳染料，摇匀。
b：倒胶：将制好的琼脂糖凝胶缓慢倒于制胶托盘内，避免产⽣⽓泡。将点样梳⼦垂直置于电泳胶膜的⼀端，距离托盘底部约1mm。放置时尽量保持平稳，切勿晃动。
c：置胶：待约 30 分钟左右胶体充分凝固后，缓慢垂直向上拔起点样梳⼦，切勿用力过猛。（夏季适当延长凝胶时间）
d：将琼脂糖凝胶放⼊电泳槽内，加⼊电泳缓冲液，使电泳缓冲液液⾯⾼于凝胶⾯约 1-2mm。
e：将混合溴酚蓝指示剂的 DNA 样本（1ul 溴酚蓝与 2ul DNA 标本混合）加⼊到点样孔内。
f：盖上电泳槽盖，开启电源，使 DNA 从负极移向正极恒压电泳(电压恒定在 120-130v 之间，⼀般可选择 130V)。
g：DNA条带距离点样孔约1-2cm 后关闭电源，(约 30-40 分钟)取出凝胶。
h：用302nm 激发的UV凝胶成像系统观察结果。
*此方法染色染料用量相对较少。染料加入胶中可直接使用微波炉加热，制好的胶溶液可以在室温下保存直至用完。
*此胶染法(预染法)不适合预制聚丙烯酰胺凝胶，对于聚丙烯酰胺凝胶请使用泡染法(后染法)。
二：泡染法(后染法)
1：按照以上常规⽅法进⾏电泳。 用于胶回收等高浓度DNA样品强烈推荐泡染法！
2：将染料Red 10,000×储液稀释约10000倍到0.1M NaCl溶液中制成1×染色液。（例如将5μL 染料Red10,000×原装液加入到50mL 0.1M NaCl溶液中）。
3：将凝胶小心地放⼊合适的容器中（如聚丙烯容器中）缓慢加入足量的1×染⾊液浸没凝胶。室温振荡染色30min左右，最佳染⾊时间根据凝胶厚度以及琼脂糖浓度不同略有不同。对于含1％的凝胶，染色时间约30min。
4：用302nm激发的紫外凝胶成像系统观察结果。
*泡染出现的条带弯曲和拖带的现象与样品的质量和凝胶的浓度有关，并不是染料的问题！泡染比预染适当提高琼脂糖凝胶浓度约0.2%-0.3%。
*用泡染法染色时，染料用量较多。1×染料染色液室温避光保存，可重复使用3次左右。
三：核酸电泳的PAGE步骤
1：将TBE制备的凝胶放⼊电泳槽中，⽤夹⼦夹住边缘。
2：⽤配置凝胶溶液同⼀批次的5×TBE灌满缓冲液槽。⽤注射器排除凝胶底部的⽓泡。
3：⽤注射器吸取1×TBE冲洗加样孔。将DNA样品和适量的6×凝胶上样缓冲液混合，⽤微量移液管加⼊加样孔。
4：将电极与电源相连（正极接下槽），打开电源⼀般90V；1-8V/cm。进⾏电泳9h。
5：电泳⾄标准参照染料迁移⾄所需位置（⼀般是电泳到⼆甲苯完全迁出，溴酚蓝距底边2-3cm停⽌）。关闭电源，拔掉插头，弃去电泳槽中的电泳液
6：将凝胶取下来放⼊，染⾊⽫中，加3X 染料Red的1X缓冲液中的振荡染⾊30-60分，放置在紫外检测即可。
*注意事项：PAGE不能用预染或点染的方法；只能用泡染的方法显色，由于聚丙烯酰胺比较致密，染料不容易深入，显色效果没有琼酯糖凝胶好。
产品特点：
1：带形清晰整齐。
2：相对安全：独特油性⼤分⼦使其不能穿透细胞膜进⼊细胞，实验显示在凝胶染色浓度下无致突变性，可以代替致癌物溴化乙锭EB作为各种核酸电泳的染⾊剂。
3：迁移率好：EB小分子很快跑出胶外，所以EB容易导致⼩DNA⽚段看不清，本产品可以克服这⼀点。
4：定量准确：适⽤于核酸分⼦⼤⼩的确定和定量，EB对⼩DNA⽚段定量不准确。
5：染色均匀：整个凝胶负极端和正极端的亮度⼀样。EB会导致胶的整体背景稍微高些，经常出现阴 阳背景（胶的背景⼀部分亮⼀部分暗）；EB长时间、长距离的电泳，EB信号强度会相应下降。本产品可以克服这⼀点。
6：灵敏度⾼：适⽤于各种大小片段的电泳染⾊，对核酸迁移的影响小于SYBR Green I。
7：稳定性⾼：耐热，可加在缓冲液⾥，100℃溶解凝胶，防止染⾊剂没充分混匀。适用于微波或其它加热⽅法制备琼脂糖凝胶。
8：耐光性强：实验室的⽇常光线照射环境下可以常温放置24个月。
9：信噪比好：样品荧光信号强，背景信号低，荧光亮度是EB的十倍以上，⾁眼可观测到亮度明显比EB强。
10：操作简单：与EB⽤法完全⼀样，在预制胶和电泳过程中染料不降解；⽽电泳后染⾊过程也只需30分钟且无需脱⾊或冲洗。
11：适用范围⼴：适用于琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳；可用于dsDNA、ssDNA或RNA染⾊。
12：完美兼容：SafeRed兼容所有的紫外凝胶透射仪；SafeGreen兼容所有的蓝光仪和可见光仪器。本产品与EB有相近的光谱特性，⽆需改变滤光⽚及观察装置：标准的EB滤光⽚或SYBR滤光⽚都适用，使用和EB相同紫外凝胶透射仪，在300nm紫外光附近可得到最佳激发。
2：相对安全：独特油性⼤分⼦使其不能穿透细胞膜进⼊细胞，实验显示在凝胶染色浓度下无致突变性，可以代替致癌物溴化乙锭EB作为各种核酸电泳的染⾊剂。
3：迁移率好：EB小分子很快跑出胶外，所以EB容易导致⼩DNA⽚段看不清，本产品可以克服这⼀点。
4：定量准确：适⽤于核酸分⼦⼤⼩的确定和定量，EB对⼩DNA⽚段定量不准确。
5：染色均匀：整个凝胶负极端和正极端的亮度⼀样。EB会导致胶的整体背景稍微高些，经常出现阴 阳背景（胶的背景⼀部分亮⼀部分暗）；EB长时间、长距离的电泳，EB信号强度会相应下降。本产品可以克服这⼀点。
6：灵敏度⾼：适⽤于各种大小片段的电泳染⾊，对核酸迁移的影响小于SYBR Green I。
7：稳定性⾼：耐热，可加在缓冲液⾥，100℃溶解凝胶，防止染⾊剂没充分混匀。适用于微波或其它加热⽅法制备琼脂糖凝胶。
8：耐光性强：实验室的⽇常光线照射环境下可以常温放置24个月。
9：信噪比好：样品荧光信号强，背景信号低，荧光亮度是EB的十倍以上，⾁眼可观测到亮度明显比EB强。
10：操作简单：与EB⽤法完全⼀样，在预制胶和电泳过程中染料不降解；⽽电泳后染⾊过程也只需30分钟且无需脱⾊或冲洗。
11：适用范围⼴：适用于琼脂糖凝胶或聚丙烯酰胺凝胶电泳；可用于dsDNA、ssDNA或RNA染⾊。
12：完美兼容：SafeRed兼容所有的紫外凝胶透射仪；SafeGreen兼容所有的蓝光仪和可见光仪器。本产品与EB有相近的光谱特性，⽆需改变滤光⽚及观察装置：标准的EB滤光⽚或SYBR滤光⽚都适用，使用和EB相同紫外凝胶透射仪，在300nm紫外光附近可得到最佳激发。
注意事项：
1：鉴于本产品的高灵敏性，建议减少DNA的上样量。DNA 样品最佳上样量为～100ng/泳道(常规8泳道⼩胶孔)。
2：部分国产的DNA marker浓度太⾼，稀释⼀倍后使用！⽬前国产的部分marker是基于EB染料开发的酶切的混合⽚段，请使⽤后染法。
3：更换电泳缓冲液，新配置的电泳液效果好！用TBE 缓冲液代替TAE效果更好！
4：电泳时电压不宜过高，⼀般不要超过130V。与EB相⽐，本产品电泳电压要低⼀些，跑胶的时间长⼀些。
5：染料在室温或4℃下避光储存即可；若有沉淀，将染料加热⾄40-50℃并充分振荡溶解，不影响使用。
6：由于本产品具有良好的热稳定性，可以在热的琼脂糖溶液中直接添加后充分振荡混匀。也可以加到琼脂糖粉末和电泳缓冲液中，然后用微波炉加热以制备琼脂糖凝胶。
7：如果总是看到条带弥散或分离不理想，建议使⽤电泳后泡染法染胶。
8：如果用的是紫外成像仪，请选择染料Red；如果使⽤激光成像仪或在可见光下观测，请选择染料Green。
2：部分国产的DNA marker浓度太⾼，稀释⼀倍后使用！⽬前国产的部分marker是基于EB染料开发的酶切的混合⽚段，请使⽤后染法。
3：更换电泳缓冲液，新配置的电泳液效果好！用TBE 缓冲液代替TAE效果更好！
4：电泳时电压不宜过高，⼀般不要超过130V。与EB相⽐，本产品电泳电压要低⼀些，跑胶的时间长⼀些。
5：染料在室温或4℃下避光储存即可；若有沉淀，将染料加热⾄40-50℃并充分振荡溶解，不影响使用。
6：由于本产品具有良好的热稳定性，可以在热的琼脂糖溶液中直接添加后充分振荡混匀。也可以加到琼脂糖粉末和电泳缓冲液中，然后用微波炉加热以制备琼脂糖凝胶。
7：如果总是看到条带弥散或分离不理想，建议使⽤电泳后泡染法染胶。
8：如果用的是紫外成像仪，请选择染料Red；如果使⽤激光成像仪或在可见光下观测，请选择染料Green。
保存条件：
2-8°C 两年
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
