产品简介：
本产品提供一种简单快速分离纯化口腔拭子样本总DNA的方法。该试剂盒采用可特异性结合DNA的硅基质膜和独特的缓冲系统，高效专一吸附DNA，每个拭子可得到0.5-3.5 μg基因组DNA，提取的DNA片段大、纯度高、质量稳定可靠。适用于酶切、PCR、文库构建、Southern杂交等实验。
操作步骤：
1：将口腔拭子的棉签用剪刀从杆上剪下，置于2ml的离心管（自备）中，加入400µl Buffer GR。
注意：如需无RNA污染的基因组DNA，可加入4µl浓度为100mg/ml的RNase A 溶液，振荡混匀。
2：加入 20µl Proteinase K 和 400µl Buffer GL，立即涡旋振荡 15秒，充分混匀。
注意：加入Buffer GL后立即充分混匀；不可将Proteinase K 直接加入Buffer GL 中使用。
3：56˚C放置10分钟，短暂离心，使管壁上的溶液收集到管底。
4：加入400µl 无水乙醇，涡旋混匀，短暂离心，使管壁上的溶液收集到管底。
注意：加入无水乙醇后可能会产生白色沉淀，不会影响后续实验。
5：将上步所得溶液和沉淀分两次加入到已装入收集管的吸附柱（Spin Columns DS），一次最多不超过 700µl。12,000 rpm（大约13,400xg）离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
6：向吸附柱中加入500µl Buffer GW1（使用前检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
7：向吸附柱中加入500µl Buffer GW2（使用前检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm离心3分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
注意：如需进一步提高DNA纯度，可以重复步骤7。
8：12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱置于室温数分钟，彻底晾干。
注意：这一步的目的是将吸附柱残余的乙醇去除，乙醇的残留会影响后续的酶促反应（酶切、PCR等）。
9：将吸附柱置于一个新的1.5ml离心管中，向吸附柱的中间部位悬空加入 50µl Buffer GE或灭菌水，室温放置2-5分钟，12,000 rpm离心1分钟，收集DNA溶液，-20˚C保存。
注意：如果下游实验对pH值或EDTA敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5（可以用NaOH将水的pH值调至此范围），pH值低于7.0时洗脱效率不高。
若需长期保持，推荐用Buffer GE洗脱并于-20˚C保存。
注意：如需无RNA污染的基因组DNA，可加入4µl浓度为100mg/ml的RNase A 溶液，振荡混匀。
2：加入 20µl Proteinase K 和 400µl Buffer GL，立即涡旋振荡 15秒，充分混匀。
注意：加入Buffer GL后立即充分混匀；不可将Proteinase K 直接加入Buffer GL 中使用。
3：56˚C放置10分钟，短暂离心，使管壁上的溶液收集到管底。
4：加入400µl 无水乙醇，涡旋混匀，短暂离心，使管壁上的溶液收集到管底。
注意：加入无水乙醇后可能会产生白色沉淀，不会影响后续实验。
5：将上步所得溶液和沉淀分两次加入到已装入收集管的吸附柱（Spin Columns DS），一次最多不超过 700µl。12,000 rpm（大约13,400xg）离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
6：向吸附柱中加入500µl Buffer GW1（使用前检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
7：向吸附柱中加入500µl Buffer GW2（使用前检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm离心3分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
注意：如需进一步提高DNA纯度，可以重复步骤7。
8：12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱置于室温数分钟，彻底晾干。
注意：这一步的目的是将吸附柱残余的乙醇去除，乙醇的残留会影响后续的酶促反应（酶切、PCR等）。
9：将吸附柱置于一个新的1.5ml离心管中，向吸附柱的中间部位悬空加入 50µl Buffer GE或灭菌水，室温放置2-5分钟，12,000 rpm离心1分钟，收集DNA溶液，-20˚C保存。
注意：如果下游实验对pH值或EDTA敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5（可以用NaOH将水的pH值调至此范围），pH值低于7.0时洗脱效率不高。
若需长期保持，推荐用Buffer GE洗脱并于-20˚C保存。
产品特点：
1：采用硅基质膜原理，简单、快速从口腔拭子中提取基因组DNA。
2：提取的基因组DNA片段大、纯度高。
3：单个拭子样本得率达到0.5-3.5μg。
2：提取的基因组DNA片段大、纯度高。
3：单个拭子样本得率达到0.5-3.5μg。
组分：
| 组分名称 | 50T | 200T | 储存 |
| Buffer GR | 25mL | 120mL | RT |
| Buffer GL | 25mL | 120mL | RT |
| Buffer GW1(concentrate) | 13mL | 52mL | RT |
| Buffer GW2(concentrate) | 15mL | 60mL | RT |
| Buffer GE | 15mL | 60mL | RT |
| Proteinase K | 1mL | 4x1mL | -20℃ |
| Spin Columns DS with Colletion Tubes | 50 | 200 | RT |
注意事项：
1：第一次使用前应按照试剂瓶标签说明在Buffer GW1和Buffer GW2 中加入无水乙醇。
2：使用前若发现Buffer GL有沉淀，请将Buffer GL放于56˚C水浴溶解。
3：所有离心操作均在室温下完成。
4：取样：使用口腔拭子在口腔内壁擦拭6次，晾干2小时保存，为确保样本不被食物或饮料污染，取样前30分钟请勿进食饮水。
2：使用前若发现Buffer GL有沉淀，请将Buffer GL放于56˚C水浴溶解。
3：所有离心操作均在室温下完成。
4：取样：使用口腔拭子在口腔内壁擦拭6次，晾干2小时保存，为确保样本不被食物或饮料污染，取样前30分钟请勿进食饮水。
保存条件：
室温 12个月
自备试剂：
无水乙醇(E20003)
1.5mL离心管
1.5mL离心管
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
