产品简介：
传统的人类基因组 DNA 样品的采集并提取全血基因组 DNA 获得。该方法有几个明显的缺点:需要一定的采血设备并需要具有医务知 识的人员来完成;抽血的疼痛造成排斥拒绝采样;侵入性采集增加了感染的可能性;采集后血液样品必须低温运输保存。
本试剂盒可提供无疼痛，非侵入性的方法，患者不用忍受抽血的疼痛和感染的风险就能获得高质量，高数量的样品，受测试者排斥性低，婴儿和 老人都能方便取得 DNA 样本。收集过程十分简便，受测者将唾液吐至保存液内混匀就完成收集过程。混匀后常温下可运输保存长达一 年不会变质。能够节省运送，保存冷藏设备和电力费用。收集的唾液通过几个简单步骤便可提取 DNA。抽取的DNA 产量平均达110μg/2ml 唾液。
本试剂盒可提供无疼痛，非侵入性的方法，患者不用忍受抽血的疼痛和感染的风险就能获得高质量，高数量的样品，受测试者排斥性低，婴儿和 老人都能方便取得 DNA 样本。收集过程十分简便，受测者将唾液吐至保存液内混匀就完成收集过程。混匀后常温下可运输保存长达一 年不会变质。能够节省运送，保存冷藏设备和电力费用。收集的唾液通过几个简单步骤便可提取 DNA。抽取的DNA 产量平均达110μg/2ml 唾液。
操作步骤：
唾液样品收集步骤
1：用清水漱口 1-2 次，然后吐掉。
2：漱口后等候至少 5 分钟方可采集唾液，其间不要进食，饮用各种饮料。
3：将唾液(不用喉咙中痰液)吐到 5ml 采集管中，直至 2ml 刻度位置。(不可将痰液吐到收集管中，若唾液不足，可做口舌运动，促进分泌。浮在唾液上层的少量泡沫不包括在 2ml 唾液采集量内，采集过程必须在 30 分钟内完成)。
4：将等体积 2ml 保存液全部倒在 5ml 唾液采集管中，充分颠倒混匀后旋紧盖子。
(以 2ml 唾液两举例，可按比例放大缩小每次提取的唾液量。)
细胞裂解
1：将保存液/唾液混合物放置于 50℃ 水浴中至少1小时或 50℃ 空气孵箱至少 2 小时。
2：转移 4ml 混合物(2ml 唾液加 2ml 保存液)到一个15ml或者 50ml 的离心管。
3：加入 1ml 裂解液和 10μlRNase A 溶液(10mg/ml).高速涡旋振荡 10 秒后室温放置 10 分钟。
杂质沉淀
4：加入 1.7ml 杂质沉淀液到上述裂解混合物中。
5：高速涡旋振荡 25 秒，充分混匀杂质沉淀液和裂解混合物。
6：2500x g 离心5分钟。沉淀的杂质和蛋白会在管底形成一个致密的沉淀团。如果蛋白沉淀不太致密，可以冰上放置5分钟，然后重复步骤 6。
DNA 沉淀
7：仔细转移上清(含有 DNA)到一个新的15ml或者50ml的离心管。注意不要触动管底沉淀。加入5ml 异丙醇。(唾液 DNA 含量较低时，加入 40μlGlycogen 20mg/ml 可能提高一些产量)。
8：轻柔颠倒混匀 30-50 次。
9：2000x g 离心 3 分钟，此时一般可在管底看到白色的DNA沉淀。
10：倒弃上清，倒置后在吸水纸上轻敲几下以尽可能吸干。加入5ml70%乙醇，颠倒几次漂洗DNA沉淀。
11：2000x g 离心 1 分钟，仔细倒去上清(沉淀很松，注意不要把DNA沉淀倒掉了)。
12：倒置后在吸水纸上轻敲几下以控干残留乙醇，还可以用枪头小心吸掉管底沉淀周围和管壁的残留乙醇，空气晾干沉淀几分钟(不要干过头，也不要残留乙醇)。
DNA 溶解水化
13：加入 250μl-400μlDNA 溶解液重新水化溶解 DNA 沉淀，轻弹管壁混匀。
14：可以放置在65℃温育30-60分钟(不要超过一小时)，然后在室温或者4℃放置过夜来重新水化 DNA，中间不时的轻弹管壁帮助重新水化DNA。
15：DNA 可以存放在2-8℃，如果要长时间存放，可以放置在-20℃或者-80℃。
1：用清水漱口 1-2 次，然后吐掉。
2：漱口后等候至少 5 分钟方可采集唾液，其间不要进食，饮用各种饮料。
3：将唾液(不用喉咙中痰液)吐到 5ml 采集管中，直至 2ml 刻度位置。(不可将痰液吐到收集管中，若唾液不足，可做口舌运动，促进分泌。浮在唾液上层的少量泡沫不包括在 2ml 唾液采集量内，采集过程必须在 30 分钟内完成)。
4：将等体积 2ml 保存液全部倒在 5ml 唾液采集管中，充分颠倒混匀后旋紧盖子。
(以 2ml 唾液两举例，可按比例放大缩小每次提取的唾液量。)
细胞裂解
1：将保存液/唾液混合物放置于 50℃ 水浴中至少1小时或 50℃ 空气孵箱至少 2 小时。
2：转移 4ml 混合物(2ml 唾液加 2ml 保存液)到一个15ml或者 50ml 的离心管。
3：加入 1ml 裂解液和 10μlRNase A 溶液(10mg/ml).高速涡旋振荡 10 秒后室温放置 10 分钟。
杂质沉淀
4：加入 1.7ml 杂质沉淀液到上述裂解混合物中。
5：高速涡旋振荡 25 秒，充分混匀杂质沉淀液和裂解混合物。
6：2500x g 离心5分钟。沉淀的杂质和蛋白会在管底形成一个致密的沉淀团。如果蛋白沉淀不太致密，可以冰上放置5分钟，然后重复步骤 6。
DNA 沉淀
7：仔细转移上清(含有 DNA)到一个新的15ml或者50ml的离心管。注意不要触动管底沉淀。加入5ml 异丙醇。(唾液 DNA 含量较低时，加入 40μlGlycogen 20mg/ml 可能提高一些产量)。
8：轻柔颠倒混匀 30-50 次。
9：2000x g 离心 3 分钟，此时一般可在管底看到白色的DNA沉淀。
10：倒弃上清，倒置后在吸水纸上轻敲几下以尽可能吸干。加入5ml70%乙醇，颠倒几次漂洗DNA沉淀。
11：2000x g 离心 1 分钟，仔细倒去上清(沉淀很松，注意不要把DNA沉淀倒掉了)。
12：倒置后在吸水纸上轻敲几下以控干残留乙醇，还可以用枪头小心吸掉管底沉淀周围和管壁的残留乙醇，空气晾干沉淀几分钟(不要干过头，也不要残留乙醇)。
DNA 溶解水化
13：加入 250μl-400μlDNA 溶解液重新水化溶解 DNA 沉淀，轻弹管壁混匀。
14：可以放置在65℃温育30-60分钟(不要超过一小时)，然后在室温或者4℃放置过夜来重新水化 DNA，中间不时的轻弹管壁帮助重新水化DNA。
15：DNA 可以存放在2-8℃，如果要长时间存放，可以放置在-20℃或者-80℃。
产品特点：
1：非侵入性采检方式免除了抽血的疼痛和降低了污染风险，并增加了取检的便利性，可由受检者自行取样。
2：仅需2mL的唾液样本，即可取得约 110μg 的 DNA(不同个体产量差异很大)。
3：采样后的检体可稳定的储存于室温环境一年以上。
2：仅需2mL的唾液样本，即可取得约 110μg 的 DNA(不同个体产量差异很大)。
3：采样后的检体可稳定的储存于室温环境一年以上。
组分：
| 组分名称 | 10T | 50T | 储存 |
| 保存液 | 10X2mL | 50X2mL | RT |
| 细胞裂解液 | 10mL | 50mL | RT |
| 杂质沉淀液 | 17mL | 85mL | RT |
| DNA 溶解液 | 10mL | 20mL | RT |
| 5 ml 采集管 | 10个 | 50个 | RT |
注意事项：
1：如需长期保存，可将各试剂组分置于2-8℃，使用时如发现析出和沉淀,可于37℃水浴加热几分钟助溶，恢复澄清透明后冷却至室温使用。
2：本试剂长时间暴露于空气中易挥发，氧化，pH值变化，故使用后应及时盖紧盖子。
2：本试剂长时间暴露于空气中易挥发，氧化，pH值变化，故使用后应及时盖紧盖子。
保存条件：
室温 12个月
自备试剂：
70%乙醇
异丙醇(I20020)
异丙醇(I20020)
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
