产品简介：
本产品提供了一种快速、灵活的方法，适用于新鲜或冷冻全血（用柠檬酸盐、EDTA或肝素等抗凝剂处理过的样品）提取总DNA，包括基因组DNA和线粒体DNA。本品可以灵活处理0.1-20 ml的全血，采用非离心柱的方法，无需使用苯酚、氯仿等有机溶剂，有效去除蛋白、色素、脂类及其它抑制性杂质污染。整个过程在一个管中操作，减少了污染及样本混淆的风险。提取的DNA产量高、质量好，可直接用于PCR、荧光定量PCR、酶切和Southern Blot以及文库构建等实验。
操作步骤：
一：从 100-900μl 全血中提取基因组 DNA(以300μl血液处理量为例)
1：取 300μl 全血于 2ml 离心管中，加入 600μl(2×样本体积)1×Buffer RCL，上下颠倒混匀，室温放置 3 min，10,000xg 离心 30 秒，弃上清。
2：如果红色较重，再重复步骤1一次。
注意：在极少情况下沉淀可能会松弛，所以要缓慢倒掉上清。将离心管倒置在吸水纸上，可以减少管壁上清的回流。
3：按照附表配制Buffer GL与Proteinase K 的混合液（比例100：1）。
注意：此混合液最好现用现配，并在配好后1小时之内用完。
4：加入150µl Buffer GL与Proteinase K的混合液，立即涡旋混匀至溶液无团块。
注意：如果有多个样品同时操作，加入BufferGL/Proteinase K混合液立即涡旋振荡，不要等所有样品都加完了再振荡。
通常涡旋振荡3-5次，每次5秒，可以使沉淀充分悬浮，如果涡旋振荡后发现沉淀中含胶状物质，可以再加入30µl BufferGL/Proteinase K 混合液，再次涡旋混匀。
5：65℃ 孵育 10 分钟，期间颠倒混匀数次。
注意:如果样品颜色从红色变成橄榄绿，说明蛋白消化完全。
6：加入 150μl 异丙醇，上下颠倒彻底混匀直至出现丝状或者簇状基因组 DNA。
注意:与异丙醇完全混合对于沉淀 DNA 非常重要，如果样品中白细胞含量少，可能看不到 DNA，则至少上下颠倒离心管 20 次确保沉淀完全。
7：10,000xg 离心 5 分钟。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心力。
8：弃上清，并把离心管倒置于干净的吸水纸上吸干。少数时候沉淀可能贴壁不牢，不要吸弃沉淀。
9：加入 300μl 70%乙醇，涡旋振荡5秒，10,000xg 离心 5 分钟，弃上清。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心 力。
10：把离心管倒置于干净的吸水纸上 5 分钟，确保沉淀在管中。在管底可见白色的 DNA 沉淀，在极少数情况下沉淀可能会松弛，所 以尽量缓慢倒掉上清。
11：空气干燥DNA沉淀直至所有的液体挥发干净(至少 5 分钟)。乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切或者 PCR 等)实验，但避 免过度干燥 DNA，因为过度干燥会使 DNA 难于溶解。
12：加入100 - 200μl Buffer GE， 低速涡旋 5 秒，65℃ 孵育1小时溶解DNA，期间轻弹数次助溶，-20℃ 保存DNA。如果DNA没有完全溶解，可室温过夜。
二：从 1-5ml 全血中提取基因组 DNA(以 3ml 血液处理量为例)
1：取 3ml 全血于 15ml 离心管中，加入 6ml(2×样本体积)1×Buffer RCL，上下颠倒混匀，室温放置 3 min，10,000xg 离心 30 秒，弃上清。
2：如果红色较重，再重复步骤 1 一次。
注意:在极少情况下沉淀可能会松弛，所以要缓慢倒掉上清。将离心管倒置在吸水纸上，可以减少管壁上清的回流。
3：按照附表配制BufferGL与Proteinase K的混合液(比例 100:1)。
注意:此混合液最好现用现配，并在配好后 1 小时之内用完。
4：加入 1.5 ml BufferGL 与 Proteinase K 的混合液，立即涡旋混匀至溶液无团块。
注意:如果有多个样品同时操作，加入 BufferGL/Proteinase K 混合液立即涡旋振荡，不要等所有样品都加完了再振荡。
通常涡旋振荡 3-5 次，每次 5 秒，可以使沉淀充分悬浮，如果涡旋振荡后发现沉淀中含胶状物质，可以再加入 300μl BufferGL/Proteinase K 混合液，再次涡旋混匀。
5：65℃ 孵育 10-30 分钟，期间颠倒混匀数次。
注意:如果样品颜色从红色变成橄榄绿，说明蛋白消化完全。
6：加入1.5ml异丙醇，上下颠倒彻底混匀直至出现丝状或者簇状基因组 DNA。
注意:与异丙醇完全混合对于沉淀 DNA 非常重要，如果样品中白细胞含量少，可能看不到 DNA，则至少上下颠倒离心管 20 次确 保沉淀完全。
7：2,500xg 离心 5 分钟。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心力。
8：弃上清，并把离心管倒置于干净的吸水纸上吸干。少数时候沉淀可能贴壁不牢，不要吸弃沉淀。
9：加入 1.5ml 70%乙醇，涡旋振荡 5 秒，2,500xg 离心 5 分钟，弃上清。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心力。
10：把离心管倒置于干净的吸水纸上 5 分钟，确保沉淀在管中。在管底可见白色的 DNA 沉淀，在极少数情况下沉淀可能会松弛，所 以尽量缓慢倒掉上清。
11：空气干燥 DNA 沉淀直至所有的液体挥发干净(至少 5 分钟)。乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切或者 PCR 等)实验，但避 免过度干燥 DNA，因为过度干燥会使DNA难于溶解。
12：加入 300μl Buffer GE， 低速涡旋 5 秒，65℃ 孵育 1 小时溶解 DNA，期间轻弹数次助溶，-20℃ 保存 DNA。如果 DNA 没有完 全溶解，可室温过夜。
三：从 6-20ml 全血中提取基因组 DNA(以 10ml 血液处理量为例)
1：取 10ml 全血于 50ml 离心管中，加入 20ml(2×样本体积)1×Buffer RCL，上下颠倒混匀，室温放置 3 min，10,000xg 离心 30 秒，弃上清。
2：如果红色较重，再重复步骤 1 一次。
注意:在极少情况下沉淀可能会松弛，所以要缓慢倒掉上清。将离心管倒置在吸水纸上，可以减少管壁上清的回流。
3：按照附表配制 BufferGL 与 Proteinase K 的混合液(比例 100:1)。
注意:此混合液最好现用现配，并在配好后 1 小时之内用完。
4：加入 5 ml Buffer GL 与 Proteinase K 的混合液，立即涡旋混匀至溶液无团块。
如果有多个样品同时操作，加入 BufferGL/Proteinase K 混合液立即涡旋振荡，不要等所有样品都加完了再振荡。
通常涡旋振荡 3-5 次，每次 5 秒，可以使沉淀充分悬浮，如果涡旋振荡后发现沉淀中含胶状物质，可以再加入 1ml BufferGL/Proteinase K 混合液，再次涡旋混匀。
5：65℃ 孵育 10-30 分钟，期间颠倒混匀数次。
注意:如果样品颜色从红色变成橄榄绿，说明蛋白消化完全。
6：加入 5ml 异丙醇，上下颠倒彻底混匀直至出现丝状或者簇状基因组 DNA。
注意:与异丙醇完全混合对于沉淀 DNA 非常重要，如果样品中白细胞含量少，可能看不到 DNA，则至少上下颠倒离心管 20 次确保沉淀完全。
7：2,500xg 离心 5 分钟。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心力。
8：弃上清，并把离心管倒置于干净的吸水纸上吸干。少数时候沉淀可能贴壁不牢，不要吸弃沉淀。
9：加入 5ml 70%乙醇，涡旋振荡 5 秒，2,500xg 离心 5 分钟，弃上清。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心力。
10：把离心管倒置于干净的吸水纸上 5 分钟，确保沉淀在管中。在管底可见白色的 DNA 沉淀，在极少数情况下沉淀可能会松弛，所 以尽量缓慢倒掉上清。
11：空气干燥 DNA 沉淀直至所有的液体挥发干净(至少 5 分钟)。乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切或者 PCR 等)实验，但避 免过度干燥 DNA，因为过度干燥会使 DNA 难于溶解。
12：加入 1ml Buffer GE， 低速涡旋5秒，65℃ 孵育1小时溶解 DNA，期间轻弹数次助溶，-20℃ 保存 DNA。如果DNA没有完全溶解，可室温过夜。
附不同体积血液所需各种缓冲液用量
1：取 300μl 全血于 2ml 离心管中，加入 600μl(2×样本体积)1×Buffer RCL，上下颠倒混匀，室温放置 3 min，10,000xg 离心 30 秒，弃上清。
2：如果红色较重，再重复步骤1一次。
注意：在极少情况下沉淀可能会松弛，所以要缓慢倒掉上清。将离心管倒置在吸水纸上，可以减少管壁上清的回流。
3：按照附表配制Buffer GL与Proteinase K 的混合液（比例100：1）。
注意：此混合液最好现用现配，并在配好后1小时之内用完。
4：加入150µl Buffer GL与Proteinase K的混合液，立即涡旋混匀至溶液无团块。
注意：如果有多个样品同时操作，加入BufferGL/Proteinase K混合液立即涡旋振荡，不要等所有样品都加完了再振荡。
通常涡旋振荡3-5次，每次5秒，可以使沉淀充分悬浮，如果涡旋振荡后发现沉淀中含胶状物质，可以再加入30µl BufferGL/Proteinase K 混合液，再次涡旋混匀。
5：65℃ 孵育 10 分钟，期间颠倒混匀数次。
注意:如果样品颜色从红色变成橄榄绿，说明蛋白消化完全。
6：加入 150μl 异丙醇，上下颠倒彻底混匀直至出现丝状或者簇状基因组 DNA。
注意:与异丙醇完全混合对于沉淀 DNA 非常重要，如果样品中白细胞含量少，可能看不到 DNA，则至少上下颠倒离心管 20 次确保沉淀完全。
7：10,000xg 离心 5 分钟。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心力。
8：弃上清，并把离心管倒置于干净的吸水纸上吸干。少数时候沉淀可能贴壁不牢，不要吸弃沉淀。
9：加入 300μl 70%乙醇，涡旋振荡5秒，10,000xg 离心 5 分钟，弃上清。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心 力。
10：把离心管倒置于干净的吸水纸上 5 分钟，确保沉淀在管中。在管底可见白色的 DNA 沉淀，在极少数情况下沉淀可能会松弛，所 以尽量缓慢倒掉上清。
11：空气干燥DNA沉淀直至所有的液体挥发干净(至少 5 分钟)。乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切或者 PCR 等)实验，但避 免过度干燥 DNA，因为过度干燥会使 DNA 难于溶解。
12：加入100 - 200μl Buffer GE， 低速涡旋 5 秒，65℃ 孵育1小时溶解DNA，期间轻弹数次助溶，-20℃ 保存DNA。如果DNA没有完全溶解，可室温过夜。
二：从 1-5ml 全血中提取基因组 DNA(以 3ml 血液处理量为例)
1：取 3ml 全血于 15ml 离心管中，加入 6ml(2×样本体积)1×Buffer RCL，上下颠倒混匀，室温放置 3 min，10,000xg 离心 30 秒，弃上清。
2：如果红色较重，再重复步骤 1 一次。
注意:在极少情况下沉淀可能会松弛，所以要缓慢倒掉上清。将离心管倒置在吸水纸上，可以减少管壁上清的回流。
3：按照附表配制BufferGL与Proteinase K的混合液(比例 100:1)。
注意:此混合液最好现用现配，并在配好后 1 小时之内用完。
4：加入 1.5 ml BufferGL 与 Proteinase K 的混合液，立即涡旋混匀至溶液无团块。
注意:如果有多个样品同时操作，加入 BufferGL/Proteinase K 混合液立即涡旋振荡，不要等所有样品都加完了再振荡。
通常涡旋振荡 3-5 次，每次 5 秒，可以使沉淀充分悬浮，如果涡旋振荡后发现沉淀中含胶状物质，可以再加入 300μl BufferGL/Proteinase K 混合液，再次涡旋混匀。
5：65℃ 孵育 10-30 分钟，期间颠倒混匀数次。
注意:如果样品颜色从红色变成橄榄绿，说明蛋白消化完全。
6：加入1.5ml异丙醇，上下颠倒彻底混匀直至出现丝状或者簇状基因组 DNA。
注意:与异丙醇完全混合对于沉淀 DNA 非常重要，如果样品中白细胞含量少，可能看不到 DNA，则至少上下颠倒离心管 20 次确 保沉淀完全。
7：2,500xg 离心 5 分钟。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心力。
8：弃上清，并把离心管倒置于干净的吸水纸上吸干。少数时候沉淀可能贴壁不牢，不要吸弃沉淀。
9：加入 1.5ml 70%乙醇，涡旋振荡 5 秒，2,500xg 离心 5 分钟，弃上清。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心力。
10：把离心管倒置于干净的吸水纸上 5 分钟，确保沉淀在管中。在管底可见白色的 DNA 沉淀，在极少数情况下沉淀可能会松弛，所 以尽量缓慢倒掉上清。
11：空气干燥 DNA 沉淀直至所有的液体挥发干净(至少 5 分钟)。乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切或者 PCR 等)实验，但避 免过度干燥 DNA，因为过度干燥会使DNA难于溶解。
12：加入 300μl Buffer GE， 低速涡旋 5 秒，65℃ 孵育 1 小时溶解 DNA，期间轻弹数次助溶，-20℃ 保存 DNA。如果 DNA 没有完 全溶解，可室温过夜。
三：从 6-20ml 全血中提取基因组 DNA(以 10ml 血液处理量为例)
1：取 10ml 全血于 50ml 离心管中，加入 20ml(2×样本体积)1×Buffer RCL，上下颠倒混匀，室温放置 3 min，10,000xg 离心 30 秒，弃上清。
2：如果红色较重，再重复步骤 1 一次。
注意:在极少情况下沉淀可能会松弛，所以要缓慢倒掉上清。将离心管倒置在吸水纸上，可以减少管壁上清的回流。
3：按照附表配制 BufferGL 与 Proteinase K 的混合液(比例 100:1)。
注意:此混合液最好现用现配，并在配好后 1 小时之内用完。
4：加入 5 ml Buffer GL 与 Proteinase K 的混合液，立即涡旋混匀至溶液无团块。
如果有多个样品同时操作，加入 BufferGL/Proteinase K 混合液立即涡旋振荡，不要等所有样品都加完了再振荡。
通常涡旋振荡 3-5 次，每次 5 秒，可以使沉淀充分悬浮，如果涡旋振荡后发现沉淀中含胶状物质，可以再加入 1ml BufferGL/Proteinase K 混合液，再次涡旋混匀。
5：65℃ 孵育 10-30 分钟，期间颠倒混匀数次。
注意:如果样品颜色从红色变成橄榄绿，说明蛋白消化完全。
6：加入 5ml 异丙醇，上下颠倒彻底混匀直至出现丝状或者簇状基因组 DNA。
注意:与异丙醇完全混合对于沉淀 DNA 非常重要，如果样品中白细胞含量少，可能看不到 DNA，则至少上下颠倒离心管 20 次确保沉淀完全。
7：2,500xg 离心 5 分钟。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心力。
8：弃上清，并把离心管倒置于干净的吸水纸上吸干。少数时候沉淀可能贴壁不牢，不要吸弃沉淀。
9：加入 5ml 70%乙醇，涡旋振荡 5 秒，2,500xg 离心 5 分钟，弃上清。如果沉淀贴壁不牢，可以适当延长离心时间或者增大离心力。
10：把离心管倒置于干净的吸水纸上 5 分钟，确保沉淀在管中。在管底可见白色的 DNA 沉淀，在极少数情况下沉淀可能会松弛，所 以尽量缓慢倒掉上清。
11：空气干燥 DNA 沉淀直至所有的液体挥发干净(至少 5 分钟)。乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切或者 PCR 等)实验，但避 免过度干燥 DNA，因为过度干燥会使 DNA 难于溶解。
12：加入 1ml Buffer GE， 低速涡旋5秒，65℃ 孵育1小时溶解 DNA，期间轻弹数次助溶，-20℃ 保存 DNA。如果DNA没有完全溶解，可室温过夜。
附不同体积血液所需各种缓冲液用量
| 血液体积的体积(μl): | 100 | 300 | 1000 | 3000 | 5000 | 10000 | 20000 |
| 1×Buffer RCL (μl) | 400 | 1200 | 4000 | 12000 | 20000 | 40000 | 80000 |
| Buffer GL (μl) | 50 | 150 | 500 | 1500 | 2500 | 5000 | 10000 |
| Proteinase K (μl) | 0.5 | 1.5 | 5 | 15 | 25 | 50 | 100 |
| 异丙醇 (μl) | 50 | 150 | 500 | 1500 | 2500 | 5000 | 10000 |
| 70%乙醇 (μl) | 50 | 150 | 500 | 1500 | 2500 | 5000 | 10000 |
| Buffer GE (μl) | 100 | 200 | 200 | 300 | 500 | 1000 | 1000 |
| 补加 Buffer GL 和 Proteinase K 混合液 | 10 | 30 | 100 | 300 | 500 | 1000 | 1000 |
产品特点：
1：纯度高：提取的基因组DNA可直接用于下游PCR、荧光定量PCR、酶切等各种实验。
2：提取量大：可从0.1-20 ml的全血中提取DNA，无需使用苯酚、氯仿等有机溶剂。
3：兼容性强：适用于处理各种血液和细胞样本。
2：提取量大：可从0.1-20 ml的全血中提取DNA，无需使用苯酚、氯仿等有机溶剂。
3：兼容性强：适用于处理各种血液和细胞样本。
组分：
| 组分名称 | 50T | 200T | 储存 |
| 10×Buffer RCL | 25mL | 100mL | 2-8˚C |
| Buffer GL | 30mL | 120mL | RT |
| Buffer GE | 15mL | 60 mL | RT |
| Proteinase K | 250ul | 1mL | RT |
注意事项：
1：根据需要取相应量的 10×Buffer RCL 稀释成 1×工作液，1ml 血液需要 0.4ml 10×Buffer RCL。
2：所有离心操作均在室温下完成。
3：血液样品反复冻融，会导致提取的 DNA 片段较小且提取量下降，所得的基因组 DNA 也应尽可能避免反复冻融，以免降解。如果 提取冷冻血液的基因组 DNA，建议 37℃ 水浴，迅速解冻后再进行后续操作。
血液样品的储存:
短期保存:已加入抗凝剂的血液样品可在 2-8℃ 储存最多 10 天，对于某些实验例如 Southern 杂交等，需要得到完整全长的 基因组 DNA，请将血液样品在 2-8℃ 储存不超过 3 天，此时基因组 DNA 的降解程度较轻。
长期保存:已加入抗凝剂的血液请置于-70℃ 保存(如果提取的是高分子量的 DNA，推荐使用 EDTA 作为抗凝剂)。
2：所有离心操作均在室温下完成。
3：血液样品反复冻融，会导致提取的 DNA 片段较小且提取量下降，所得的基因组 DNA 也应尽可能避免反复冻融，以免降解。如果 提取冷冻血液的基因组 DNA，建议 37℃ 水浴，迅速解冻后再进行后续操作。
血液样品的储存:
短期保存:已加入抗凝剂的血液样品可在 2-8℃ 储存最多 10 天，对于某些实验例如 Southern 杂交等，需要得到完整全长的 基因组 DNA，请将血液样品在 2-8℃ 储存不超过 3 天，此时基因组 DNA 的降解程度较轻。
长期保存:已加入抗凝剂的血液请置于-70℃ 保存(如果提取的是高分子量的 DNA，推荐使用 EDTA 作为抗凝剂)。
保存条件：
室温 12个月
自备试剂：
无水乙醇
异丙醇(I20020)
异丙醇(I20020)
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
