产品简介：
本产品适用于从新鲜或冷冻的血浆、血清和无细胞体液中提取病毒RNA和DNA。本品无需使用苯酚、氯仿等有机溶剂抽提，操作简单。本试剂盒采用独特的缓冲体系使裂解液中的病毒核酸高效特异地结合在硅胶质离心吸附柱上，PCR 和酶反应的抑制剂以及残留 的杂质可通过两步有效的漂洗步骤有效去除，最后使用低盐缓冲液或水洗脱，即可获得高纯度的病毒核酸。纯化的病毒核酸不含蛋白、 核酸酶和其他杂质，可直接用于 PCR、RT-PCR、Real-Time PCR、印迹实验等。
操作步骤：
1：取 1.5 ml 离心管(自备)，加入 20 μl Proteinase K。
2：向离心管中加入 200 μl 血清或血浆。加入 200 μl Buffer GL，涡旋震荡 15 秒。
第2步请注意：样本体积不足200μl可以加入 0.9% NaCl(自备)补足。
为确保样本有效裂解，加入Buffer GL后，需将样本与Buffer GL充分混匀。
3：56℃ 孵育 15 分钟，短暂离心，将管壁上的溶液收集到管底。
4：加入 250 μl 无水乙醇，涡旋震荡 15 秒，室温放置 5 分钟，短暂离心，将管壁上的溶液收集到管底。
第4步请注意：如果环境温度超过 25℃，无水乙醇应在冰上预冷后使用。
5：将步骤 4 中所得溶液加入到已装入收集管的吸附柱(RNase-Free Columns RS)中，若一次不能加完溶液，可分多次转入。12,000rpm(~13,400×g)离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
6：向吸附柱中加入 500 μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
7：向吸附柱中加入 500 μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附 柱重新放回收集管中。
第7步请注意：如需进一步提高 DNA 纯度，可重复步骤 7。
8：向吸附柱中加入 500 μl 无水乙醇，12,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
9：12,000 rpm 离心3分钟，倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟，以彻底晾干。
第9步请注意：这一步的目的是吸附柱中残余的乙醇去除，乙醇残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)。
10：将吸附柱置于一个新的灭菌的离心管中(自备)，向吸附柱膜的中间部位悬空加入 30-100 μl Buffer RE 或灭菌水，室温放置 2-5分钟，12,000 rpm 离心1分钟，收集核酸溶液。
第10步请注意：如果下游实验对 pH 值或 EDTA 敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的 pH 值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其 pH 值在 7.0-8.5(可以用 NaOH 将水的 pH 值调到此范围)，pH 值低于 7.0 时洗脱效率不高。
如需长期保存，请将 DNA 溶液置于-20℃ 保存，RNA 溶液置于-70℃保存。
如果要提高DNA/RNA的终浓度，可以将步骤10所得的DNA/RNA洗脱液重新加至吸附膜上，重复步骤10。
2：向离心管中加入 200 μl 血清或血浆。加入 200 μl Buffer GL，涡旋震荡 15 秒。
第2步请注意：样本体积不足200μl可以加入 0.9% NaCl(自备)补足。
为确保样本有效裂解，加入Buffer GL后，需将样本与Buffer GL充分混匀。
3：56℃ 孵育 15 分钟，短暂离心，将管壁上的溶液收集到管底。
4：加入 250 μl 无水乙醇，涡旋震荡 15 秒，室温放置 5 分钟，短暂离心，将管壁上的溶液收集到管底。
第4步请注意：如果环境温度超过 25℃，无水乙醇应在冰上预冷后使用。
5：将步骤 4 中所得溶液加入到已装入收集管的吸附柱(RNase-Free Columns RS)中，若一次不能加完溶液，可分多次转入。12,000rpm(~13,400×g)离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
6：向吸附柱中加入 500 μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
7：向吸附柱中加入 500 μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附 柱重新放回收集管中。
第7步请注意：如需进一步提高 DNA 纯度，可重复步骤 7。
8：向吸附柱中加入 500 μl 无水乙醇，12,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
9：12,000 rpm 离心3分钟，倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟，以彻底晾干。
第9步请注意：这一步的目的是吸附柱中残余的乙醇去除，乙醇残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)。
10：将吸附柱置于一个新的灭菌的离心管中(自备)，向吸附柱膜的中间部位悬空加入 30-100 μl Buffer RE 或灭菌水，室温放置 2-5分钟，12,000 rpm 离心1分钟，收集核酸溶液。
第10步请注意：如果下游实验对 pH 值或 EDTA 敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的 pH 值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其 pH 值在 7.0-8.5(可以用 NaOH 将水的 pH 值调到此范围)，pH 值低于 7.0 时洗脱效率不高。
如需长期保存，请将 DNA 溶液置于-20℃ 保存，RNA 溶液置于-70℃保存。
如果要提高DNA/RNA的终浓度，可以将步骤10所得的DNA/RNA洗脱液重新加至吸附膜上，重复步骤10。
组分：
| 组分名称 | 50T |
| Buffer GL | 15mL |
| Buffer GW1 (concentrate) | 13mL |
| Buffer GW2 (concentrate) | 15mL |
| Buffer RE | 10mL |
| Proteinase K | 1mL |
| Spin Columns RS With Collection Tubes | 50个 |
注意事项：
1：样品应避免反复冻融，否则会导致提取的 DNA 片段较小且提取量下降。
2：血清或血浆避免反复冻融，反复冻融会导致蛋白变性或产生沉淀，减少病毒滴度进而影响提取病毒核酸的产量。
3：第一次使用前应按照试剂瓶标签说明在 Buffer GW1 和 Buffer GW2 中加入无水乙醇。
4：使用前请检查 Buffer GL 是否出现结晶或者沉淀，如有结晶或者沉淀，请将 Buffer GL 于 56℃ 水浴重新溶解。
2：血清或血浆避免反复冻融，反复冻融会导致蛋白变性或产生沉淀，减少病毒滴度进而影响提取病毒核酸的产量。
3：第一次使用前应按照试剂瓶标签说明在 Buffer GW1 和 Buffer GW2 中加入无水乙醇。
4：使用前请检查 Buffer GL 是否出现结晶或者沉淀，如有结晶或者沉淀，请将 Buffer GL 于 56℃ 水浴重新溶解。
保存条件：
室温 12个月
自备试剂：
无水乙醇(E20003)
氯化钠溶液(PS0740)
氯化钠溶液(PS0740)
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
