产品简介：
本产品经过特殊改进的植物 DNA 抽提液内(添加多种针对植物特点的多糖、多酚去除成份)迅速裂解细胞和灭活细胞内核酸酶，氯仿 抽提后通过离心清除多糖、多酚和蛋白质(根据需要，上清中还加入异丙醇离心沉淀基因组 DNA，进一步去除其它各种杂质)，然后 基因组 DNA 在高离序盐状态下选择性吸附于离心柱内硅基质膜，再通过一系列快速的漂洗-离心的步骤， 进一步将多糖、多酚和细 胞代谢物、蛋白等杂质去除，最后低盐的洗脱缓冲液将纯净基因组 DNA 从硅基质膜上洗脱。
操作步骤：
第一次使用前请先在漂洗液WB和结合液PQ中加入指定量的无水乙醇，充分混匀，加入后请及时在方框打钩标记已加入乙醇，以免多次加入!
取所需适量裂解液PL放置在65°C预热，使用前加入β-巯基乙醇到终浓度2%。
1：取适量植物组织(新鲜组织 100 mg 或干重组织 30 mg)在研钵中加入液氮充分碾磨成细粉。
2：转移细粉到一个 1.5ml 离心管，不要解冻，加 600μl 65°C预热的裂解液 PL (确认已加入 β-巯基乙醇至 2%)，剧烈涡旋振荡混匀，用大口径枪头轻柔吹打帮助裂解。
第2步请注意：如果组织裂解困难，可根据需要加一个轻柔匀浆 10 秒的步骤帮助裂解。
3：65°C水浴 20-30 分钟，在水浴过程中颠倒离心管以混合样品数次。
第3步注意：属于可选步骤，如果预计样品 RNA 丰富易残留，可在水浴前加入 5-6μl RNA 酶(20mg/ml)。如果组织干燥或者产量低，可以适当延长水浴时间。
如果提取的DNA残留RNA较多导致电泳时候条带拖尾，条带扭曲，背景很高等不正常电泳情况，可以加 1% RNA 酶(10mg/ml) 37°C或者室温放置半小时即可消化 RNA，消化完后不需要特殊处理便可用于 PCR 或者酶切。
4：加入 700μl 氯仿或者氯仿/异戊醇(体积比 24:1 混合)，颠倒充分混匀几分钟(或者涡旋混匀)，13,000rpm 离心 5 分钟。
第4步请注意：属于可选步骤(一般不需要):若提取的植物组织富含多糖多酚，可以在第 4 步前用等体积 Tris 饱和酚(PH8.0)/氯仿(1:1)抽提一遍。
5：小心吸取上清到一个新的 1.5ml 离心管，注意不要吸到界面物质。
第5步请注意：可选步骤(一般不需要):如上清比较浑浊，则可重复步骤 4 一遍，直到得到透亮上清。
6：较精确估算上清量，加入1.5 倍体积结合液 PQ (请先检查是否已加入无水乙醇!)后立刻涡旋，充分混匀。此时可能出现沉淀，但不影响实验结果。
7：将上一步所得混合物(包括可能出现的沉淀)加入一个吸附柱 AC 中，(吸附柱放入收集管中)13,000rpm 离心 30 秒，倒掉收集管 中的废液(先加 700μl 离心，弃废液，再加入剩余的溶液，再次离心)。
8：加入500μl抑制物去除液IR，12,000rpm离心 30 秒，弃废液。
9：加入 600μl 漂洗液 WB(请先检查是否已加入无水乙醇!)，12,000rpm 离心 30 秒，弃掉废液。
10：加入 600μl 漂洗液 WB，12,000rpm 离心 30 秒，弃掉废液。
11：将吸附柱 AC 放回空收集管中，13,000rpm 离心 2 分钟，尽量除去漂洗液， 以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
12：取出吸附柱 AC，放入一个干净的离心管中，在吸附膜的中间部位加100μl洗脱缓冲液EB(洗脱缓冲液事先在65-70°C水浴中预 热)，室温放置3-5分钟，12,000rpm离心1分钟。将得到的溶液重新加入离心吸附柱中，室温放置2分钟，12,000rpm离心1分钟。
第12步请注意：洗脱体积越大，洗脱效率越高，如果预计和需要产量高，可增大洗脱体积，如果需要 DNA 浓度较高，可以适当减少洗脱体积， 但是最小体积不应少于 50μl，体积过小降低DNA洗脱效率，减少DNA产量。
13：DNA 可以存放在 2-8°C，如果要长时间存放，可以放置在-20°C。
取所需适量裂解液PL放置在65°C预热，使用前加入β-巯基乙醇到终浓度2%。
1：取适量植物组织(新鲜组织 100 mg 或干重组织 30 mg)在研钵中加入液氮充分碾磨成细粉。
2：转移细粉到一个 1.5ml 离心管，不要解冻，加 600μl 65°C预热的裂解液 PL (确认已加入 β-巯基乙醇至 2%)，剧烈涡旋振荡混匀，用大口径枪头轻柔吹打帮助裂解。
第2步请注意：如果组织裂解困难，可根据需要加一个轻柔匀浆 10 秒的步骤帮助裂解。
3：65°C水浴 20-30 分钟，在水浴过程中颠倒离心管以混合样品数次。
第3步注意：属于可选步骤，如果预计样品 RNA 丰富易残留，可在水浴前加入 5-6μl RNA 酶(20mg/ml)。如果组织干燥或者产量低，可以适当延长水浴时间。
如果提取的DNA残留RNA较多导致电泳时候条带拖尾，条带扭曲，背景很高等不正常电泳情况，可以加 1% RNA 酶(10mg/ml) 37°C或者室温放置半小时即可消化 RNA，消化完后不需要特殊处理便可用于 PCR 或者酶切。
4：加入 700μl 氯仿或者氯仿/异戊醇(体积比 24:1 混合)，颠倒充分混匀几分钟(或者涡旋混匀)，13,000rpm 离心 5 分钟。
第4步请注意：属于可选步骤(一般不需要):若提取的植物组织富含多糖多酚，可以在第 4 步前用等体积 Tris 饱和酚(PH8.0)/氯仿(1:1)抽提一遍。
5：小心吸取上清到一个新的 1.5ml 离心管，注意不要吸到界面物质。
第5步请注意：可选步骤(一般不需要):如上清比较浑浊，则可重复步骤 4 一遍，直到得到透亮上清。
6：较精确估算上清量，加入1.5 倍体积结合液 PQ (请先检查是否已加入无水乙醇!)后立刻涡旋，充分混匀。此时可能出现沉淀，但不影响实验结果。
7：将上一步所得混合物(包括可能出现的沉淀)加入一个吸附柱 AC 中，(吸附柱放入收集管中)13,000rpm 离心 30 秒，倒掉收集管 中的废液(先加 700μl 离心，弃废液，再加入剩余的溶液，再次离心)。
8：加入500μl抑制物去除液IR，12,000rpm离心 30 秒，弃废液。
9：加入 600μl 漂洗液 WB(请先检查是否已加入无水乙醇!)，12,000rpm 离心 30 秒，弃掉废液。
10：加入 600μl 漂洗液 WB，12,000rpm 离心 30 秒，弃掉废液。
11：将吸附柱 AC 放回空收集管中，13,000rpm 离心 2 分钟，尽量除去漂洗液， 以免漂洗液中残留乙醇抑制下游反应。
12：取出吸附柱 AC，放入一个干净的离心管中，在吸附膜的中间部位加100μl洗脱缓冲液EB(洗脱缓冲液事先在65-70°C水浴中预 热)，室温放置3-5分钟，12,000rpm离心1分钟。将得到的溶液重新加入离心吸附柱中，室温放置2分钟，12,000rpm离心1分钟。
第12步请注意：洗脱体积越大，洗脱效率越高，如果预计和需要产量高，可增大洗脱体积，如果需要 DNA 浓度较高，可以适当减少洗脱体积， 但是最小体积不应少于 50μl，体积过小降低DNA洗脱效率，减少DNA产量。
13：DNA 可以存放在 2-8°C，如果要长时间存放，可以放置在-20°C。
产品特点：
1：离心吸附柱内硅基质膜全部采用进口特制吸附膜，柱与柱之间吸附量差异极小，可重复性好。克服了国产试剂盒膜质量不稳定的弊端。
2：不需要使用有毒的苯酚等试剂，也不需要乙醇沉淀等步骤。
3：快速，简捷，单个样品操作一般可在1小时内完成。
4：数种去多糖、多酚成份和多次柱漂洗确保高纯度，OD260/OD280 典型的比值达1.7-1.9，长度可达30 kb -50kb，可直接用于PCR，Southern-blot和各种酶切反应。
2：不需要使用有毒的苯酚等试剂，也不需要乙醇沉淀等步骤。
3：快速，简捷，单个样品操作一般可在1小时内完成。
4：数种去多糖、多酚成份和多次柱漂洗确保高纯度，OD260/OD280 典型的比值达1.7-1.9，长度可达30 kb -50kb，可直接用于PCR，Southern-blot和各种酶切反应。
组分：
| 组分名称 | 50T | 100T |
| 裂解液 PL | 45mL | 80mL |
| 结合液 PQ | 15mL | 30mL |
| 抑制物去除液 IR | 25mL | 50mL |
| 漂洗液 WB | 15mL | 25mL |
| 洗脱缓冲液 EB | 15mL | 15mL |
| 吸附柱 AC | 50个 | 100个 |
| 收集管(2mL) | 50个 | 100个 |
注意事项：
1：裂解液 PL、或者抑制物去除液 IR 低温时可能出现析出和沉淀，可以在 55°C水浴几分钟帮助重新溶解，恢复澄清透明后冷却到室温即可使用。结合液 PQ 盐酸胍浓度高，加入乙醇后可能出现一些沉淀不影响使用，直接取上清用。
2：避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH 值变化，各溶液使用后应及时盖紧盖子。
3：所有的离心步骤均在室温完成，使用转速可以达到 13,000rpm 的传统台式离心机，如 Eppendorf 5415C 或者类似离心机。
4：开始实验前将需要的水浴先预热到 65°C备用。
5：需要自备氯仿或者氯仿/异戊醇(体积比 24:1 混合)、无水乙醇和 β-巯基乙醇。
6：结合液 PQ 和抑制物去除液 IR 中含有刺激性化合物，操作时要戴乳胶手套，避免沾染皮肤、眼睛和衣服。若沾染皮肤、眼睛时，要用大量清水或者生理盐水冲洗。
7：不同来源的植物组织材料中提取 DNA 的量会有差异，一般 100mg 新鲜组织典型产量可达 3-25μg。
8：洗脱液 EB 不含有螯合剂 EDTA， 不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗脱， 但应该确保 pH>7.5， pH 过低影响洗脱 效率。用水洗脱 DNA 应该保存在-20°C。DNA 如果需要长期保存，可以用 TE 缓冲液洗脱 (10mM Tris-HCl，1mM EDTA，pH 8.0)，但是 EDTA 可能影响下游酶切反应，使用时可以适当稀释。
9：本试剂盒是按照标准提取过程配置各溶液体积，如果样品DNA含量低或者产量低，需要扩大提取量，还需要另外购买溶液。
2：避免试剂长时间暴露于空气中产生挥发、氧化、pH 值变化，各溶液使用后应及时盖紧盖子。
3：所有的离心步骤均在室温完成，使用转速可以达到 13,000rpm 的传统台式离心机，如 Eppendorf 5415C 或者类似离心机。
4：开始实验前将需要的水浴先预热到 65°C备用。
5：需要自备氯仿或者氯仿/异戊醇(体积比 24:1 混合)、无水乙醇和 β-巯基乙醇。
6：结合液 PQ 和抑制物去除液 IR 中含有刺激性化合物，操作时要戴乳胶手套，避免沾染皮肤、眼睛和衣服。若沾染皮肤、眼睛时，要用大量清水或者生理盐水冲洗。
7：不同来源的植物组织材料中提取 DNA 的量会有差异，一般 100mg 新鲜组织典型产量可达 3-25μg。
8：洗脱液 EB 不含有螯合剂 EDTA， 不影响下游酶切、连接等反应。也可以使用水洗脱， 但应该确保 pH>7.5， pH 过低影响洗脱 效率。用水洗脱 DNA 应该保存在-20°C。DNA 如果需要长期保存，可以用 TE 缓冲液洗脱 (10mM Tris-HCl，1mM EDTA，pH 8.0)，但是 EDTA 可能影响下游酶切反应，使用时可以适当稀释。
9：本试剂盒是按照标准提取过程配置各溶液体积，如果样品DNA含量低或者产量低，需要扩大提取量，还需要另外购买溶液。
保存条件：
室温 12个月
自备试剂：
无水乙醇(E20003)
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
