产品简介：
本试剂盒采用高效、专一结合核酸的离心吸附柱和独特的缓冲系统，适合从各种不同的新鲜或冻存植物组织中提取基因组DNA，并可最大限度去除植物组织中的杂质。本试剂盒无需使用酚/氯仿抽提，操作安全。提取的基因组DNA片段大、纯度高、质量稳定可靠， 适用于PCR、荧光定量PCR、分子标记、文库构建等实验。
操作步骤：
1：取植物新鲜组织100 mg左右或干重组织约20 mg，加入液氮充分研磨。
2：将研磨后的粉末收集到离心管(自备)中，加入400μl Buffer LP1和6μl RNase A(10 mg/ml)，涡旋振荡1分钟，室温放置10分钟，使其充分裂解。
第2步请注意：使用涡旋振荡或移液器吹打，充分裂解组织，组织裂解不完全会影响最终的DNA得率。
请勿在使用前将Buffer LP1与RNase A混合。
3：加入130μl Buffer LP2，混匀，涡旋震荡1分钟。
4：12,000 rpm(~13,400×g)离心5分钟，将上清移至新的离心管(自备)中。
5：加入1.5倍体积的Buffer LP3(使用前检查是否已加入无水乙醇)，充分混匀(如500μl滤液加入750μl Buffer LP3)。
第5步请注意：加入Buffer LP3后应立即混匀，可能会产生沉淀但不影响后续实验。
6：将上步所得溶液和沉淀全部加入到已装入收集管的吸附柱(Spin Columns DM)中，若一次不能加完溶液，可分多次转入。12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
7：向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱 重新放回收集管中。
第7步请注意：如吸附膜呈现绿色，向吸附柱中加入500μl无水乙醇，12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收 集管中。
8：重复步骤7。
9：12,000 rpm离心2分钟，倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟，以彻底晾干。
第9步请注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除，乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)。
10：将吸附柱放到一个新离心管(自备)中，向吸附膜的中间部位悬空滴加50-100μl Buffer GE或灭菌水，室温放置2-5分钟，12,000 rpm离心1分钟，收集DNA溶液。-20℃保存DNA。
第10步请注意：如果下游实验对pH值或EDTA敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)，pH值低于7.0时洗脱效率不高。
离心之前室温孵育5分钟可以增加产量。
如果要提高DNA的终浓度，可以将步骤10所得的DNA洗脱液重新加至吸附膜上，重复步骤10;若洗脱体积小于100 μl，可以增加DNA的终浓度，但可能会减少DNA的总产量。如果所得DNA的量小于1 μg，推荐用50 μl Buffer GE进行洗脱。
因为保存在水中的DNA会受到酸性水解作用的影响，如需长期保存，推荐用Buffer GE洗脱并于-20 ℃保存。
2：将研磨后的粉末收集到离心管(自备)中，加入400μl Buffer LP1和6μl RNase A(10 mg/ml)，涡旋振荡1分钟，室温放置10分钟，使其充分裂解。
第2步请注意：使用涡旋振荡或移液器吹打，充分裂解组织，组织裂解不完全会影响最终的DNA得率。
请勿在使用前将Buffer LP1与RNase A混合。
3：加入130μl Buffer LP2，混匀，涡旋震荡1分钟。
4：12,000 rpm(~13,400×g)离心5分钟，将上清移至新的离心管(自备)中。
5：加入1.5倍体积的Buffer LP3(使用前检查是否已加入无水乙醇)，充分混匀(如500μl滤液加入750μl Buffer LP3)。
第5步请注意：加入Buffer LP3后应立即混匀，可能会产生沉淀但不影响后续实验。
6：将上步所得溶液和沉淀全部加入到已装入收集管的吸附柱(Spin Columns DM)中，若一次不能加完溶液，可分多次转入。12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
7：向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱 重新放回收集管中。
第7步请注意：如吸附膜呈现绿色，向吸附柱中加入500μl无水乙醇，12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收 集管中。
8：重复步骤7。
9：12,000 rpm离心2分钟，倒掉收集管中的废液。将吸附柱置于室温数分钟，以彻底晾干。
第9步请注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除，乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)。
10：将吸附柱放到一个新离心管(自备)中，向吸附膜的中间部位悬空滴加50-100μl Buffer GE或灭菌水，室温放置2-5分钟，12,000 rpm离心1分钟，收集DNA溶液。-20℃保存DNA。
第10步请注意：如果下游实验对pH值或EDTA敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其pH值在7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)，pH值低于7.0时洗脱效率不高。
离心之前室温孵育5分钟可以增加产量。
如果要提高DNA的终浓度，可以将步骤10所得的DNA洗脱液重新加至吸附膜上，重复步骤10;若洗脱体积小于100 μl，可以增加DNA的终浓度，但可能会减少DNA的总产量。如果所得DNA的量小于1 μg，推荐用50 μl Buffer GE进行洗脱。
因为保存在水中的DNA会受到酸性水解作用的影响，如需长期保存，推荐用Buffer GE洗脱并于-20 ℃保存。
组分：
| 组分名称 | 50T |
| Buffer LP1 | 25mL |
| Buffer LP2 | 10mL |
| Buffer LP3 (concentrate) | 21mL |
| Buffer GW2 (concentrate) | 15mL |
| Buffer GE | 10mL |
| RNase A(10mg/ml) | 300 μl |
| Spin Columns DM with Colletion Tubes | 50个 |
注意事项：
1：样品应避免反复冻融，否则会导致提取DNA片段较小且提取量下降。
2：第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明在Buffer LP3 (加27ml无水乙醇)和Buffer GW2 (加45ml无水乙醇，)中加入无水乙醇。使用前请检查Buffer LP1和Buffer LP2是否出现结晶或者沉淀，如有结晶或者沉淀，请将Buffer LP1和Buffer LP2于56℃水浴重每个新溶解。
2：第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明在Buffer LP3 (加27ml无水乙醇)和Buffer GW2 (加45ml无水乙醇，)中加入无水乙醇。使用前请检查Buffer LP1和Buffer LP2是否出现结晶或者沉淀，如有结晶或者沉淀，请将Buffer LP1和Buffer LP2于56℃水浴重每个新溶解。
保存条件：
室温 12个月
自备试剂：
无水乙醇(E20003)
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
