产品简介：
本试剂盒适合于从新鲜或冷冻的动物组织(比如鼠尾、肝脏等)，细胞，血液，细菌等多种样品中提取高纯度总 DNA。本品可纯化获得分子量最大为50kb的DNA片段，纯化过程不需要使用苯酚或氯仿等有毒溶剂，无需乙醇沉淀。本试剂盒采用优化的缓冲体系使裂解液中的DNA高效特异的结合到硅基质离心吸附柱上，PCR和其他酶促反应的抑制剂可通过两步洗涤步骤被有效去除，最后使用低 盐缓冲液或水洗脱，即可得到高纯度DNA。纯化得到的DNA可以直接用于酶切，PCR，Real-Time PCR，文库构建，Southern Blot，分子标记等下游实验。
操作步骤：
一：血液及细胞样本基因组提取
1：处理材料
①：如果提取材料为哺乳动物抗凝血液(无核红细胞)，可直接向50-200μl新鲜或冷冻的抗凝血液样品中加入Buffer GTL补足至200μl。
②：如果提取材料为禽类，鸟类，两栖类或更低级生物的抗凝血液，其红细胞为有核细胞，取 5-10μl 新鲜或冷冻的抗凝血液样品，加入Buffer GTL补足至200μl。
③：贴壁培养的细胞应先处理为细胞悬液(最大提取量为5x106个细胞)，2000rpm(400xg)离心5分钟，弃尽上清，加200μlGTL，振荡至样品彻底悬浮。
第1步注意：如需去除RNA，可在上述步骤完成后，加入 4μl 浓度为100mg/ml的RNase A溶液，涡旋15秒，室温放置2分钟。
2：加入 20μl Proteinase K 溶液,混匀。
3：加入 200μl Buffer GL，涡旋振荡充分混匀，56℃ 水浴 10 分钟。
4：短暂离心以去除管盖内壁的水珠。加入 200μl 无水乙醇，涡旋振荡充分混匀，短暂离心。
第4步请注意：加入 Buffer GL 和无水乙醇后要立即涡旋震荡混匀。
加入Buffer GL和无水乙醇后可能会产生白色沉淀，不会影响后续实验。
一些组织在加入BufferGL和无水乙醇后可能形成溶胶状产物，此时推荐进行剧烈震荡或涡旋处理。
5：上一个步骤中所得溶液全部加入到已装入收集管的吸附柱(Spin Columns DM)中，若一次不能加完溶液，可分多次转入。12,000 rpm(约 13,400 xg) 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
6：向吸附柱中加入500μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
7：向吸附柱中加入 500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸 附柱重新放回收集管中。
第7步请注意：如需进一步提高 DNA 纯度，可重复步骤7。
8：12,000 rpm 离心 2 分钟，倒掉收集管中废液。将吸附柱置于室温数分钟，以彻底晾干。
第8步请注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除，乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)。
9：将吸附柱置于一个新的离心管(自备)中，向吸附柱的中间部位悬空加入 50-200μl Buffer GE或灭菌水，室温放置2-5 分钟，12000rpm 离心1分钟，收集DNA溶液，-20̊C保存DNA。
第9步请注意：如果下游实验对pH值或EDTA 敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其pH值在 7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)，pH 值低于7.0时洗脱效率不高。
Buffer GE在65-70℃ 水浴预热，离心之前室温孵育5分钟可以增加产量;用另外的50-200μl BufferGE或灭菌水再次洗脱可以增加产量。
如果要提高DNA的终浓度，可将得到的溶液重新加入到吸附柱中，室温放置2-5分钟，12,000 rpm离心1分钟;若洗脱体积小于200 μl，可以增加DNA的终浓度，但可能会减少总产量。如果DNA的量小于1μg，推荐用50μl Buffer GE或灭菌水洗脱。
因为保存在水中的DNA会受到酸性水解作用的影响，如需长期保存，推荐用Buffer GE洗脱并于-20 ℃ 保存。
二：动物组织基因组提取
1：材料处理，如果提取材料为动物组织，取25mg(脾组织用量应少于10 mg);如果材料为鼠尾，取一段长度为0.4-0.6 cm的大鼠鼠尾或两段长度为0.4-0.6 cm的小鼠鼠尾。
①：样本进行液氮研磨或切成小块后置于 1.5 ml 离心管中，加入 180 μl Buffer GTL，将不同样品做好标记。
②：若使用匀浆器处理样本，匀浆前向样本中加入不超过 80 μl Buffer GTL，匀浆后加入 100 μl Buffer GTL。
第1步请注意：确保各组织的量不要超出推荐范围。
组织样本在加入Buffer GTL之前用液氮研磨或加入Buffer GTL用匀浆器匀浆处理，可以增加裂解效率。
2：加入 20 μl Proteinase K，涡旋震荡使样品彻底混匀。56℃ 水浴，直至组织完全裂解，孵育过程中可每隔一段时间颠倒或震荡离 心管使样品分散。
第2步请注意：不同组织消化时间不同，通常1-3小时即可完成，鼠尾需要消化6-8小时，必要时过夜消化，不会影响后续操作。
如果孵育和涡旋震荡后仍然有胶状物质，延长56℃ 孵育时间或再加入 20 μl Proteinase K 消化。
如需去除RNA，可在上述步骤完成后，加入4μl的浓度为100mg/ml 的RNase A溶液，涡旋15秒，室温放置5-10 分钟。
3：加入200μl Buffer GL涡旋震荡充分混匀，70℃ 水浴10分钟。短暂离心后加入200μl无水乙醇，涡旋震荡充分混匀。
第3步请注意：加入 Buffer GL 和无水乙醇后要立即涡旋震荡混匀。
加入 Buffer GL 和无水乙醇后可能会产生白色沉淀，不会影响后续实验。一些组织(如脾，肺)在加入 Buffer GL 和无 水乙醇后可能形成溶胶状产物，此时推荐进行剧烈震荡或涡旋处理。
4：短暂离心，将步骤 3 所得溶液全部加入到已装入收集管的吸附柱(Spin Columns DM)中，若一次不能加完溶液，可分多次转入。 12,000 rpm(约 13,400xg )离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
5：向吸附柱中加入 500 μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
6：向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm。离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
7：12,000 rpm 离心 2 分钟，倒掉收集管中废液。将吸附柱置于室温数分钟，以彻底晾干。
第7步请注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除，乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切，PCR 等)。
8：将吸附柱置于一个新的离心管(自备)中，向吸附柱的中间部位悬空加入50-200μl Buffer GE或灭菌水，室温放置2-5分钟，12,000 rpm 离心1分钟，收集DNA 溶液，-20°C保存DNA。
第8步请注意：如果下游实验对pH值或 EDTA敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其pH值在 7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)，pH 值低于7.0时洗脱效率不高。
Buffer GE在65-70°C水浴预热，离心之前室温孵育5分钟可以增加产量;用另外的50-200 μl BufferGE 或灭菌水 再次洗脱可以增加产量。
如果要提高DNA的终浓度，可将得到的溶液重新加入到吸附柱中，室温放置2-5分钟，12,000 rpm 离心1分钟; 若洗脱体积小于200 μl，可以增加DNA的终浓度，但可能会减少总产量。如果DNA的量小于1 μg，推荐用50 μl Buffer GE或灭菌水洗脱。
因为保存在水中的DNA会受到酸性水解作用的影响，如需长期保存，推荐用Buffer GE洗脱并于-20°C 保存。
三：细菌基因组提取
1：细菌样本预处理
1a：革兰氏阴性菌
①：取细菌培养物 1-5 ml(106-108个细胞，最多不超过2×109个细胞)置于离心管(自备)中，12,000 rpm(~13,400xg)离心1分钟，尽量吸净上清。
②：向沉淀中加入 180 μl Buffer GTL，振荡使菌体重悬。
③：加入20 μl Proteinase K，涡旋混匀，56°C 孵育，直至菌体完全裂解，孵育过程中每隔一段时间颠倒或震荡离心管使样本分散。
第③步请注意：如需去除 RNA，可在上述步骤完成后，加入4 μl浓度为100 mg/ml的RNase A溶液，震荡混匀，室温放置5-10分钟。
④：加入 200 μl Buffer GL，涡旋震荡混匀。
1b：革兰氏阳性菌
①：取细菌培养物 1-5 ml(106-108个细胞，最多不超过2×109个细胞)置于离心管(自备)中，12,000 rpm(~13,400xg)离心1分钟，尽量吸净上清。
②：加入 180 μl Enzymatic Lysis Buffer(自备)使菌体重悬。
③：37°C 孵育 30 分钟。
④：加入20 μl Proteinase K 涡旋震荡，充分混匀。加入200 μl Buffer GL，涡旋震荡混匀。56°C孵育30分钟。
第④请注意：如果需要，95°C 孵育15分钟可以使病原体失活，但是95°C 孵育会造成一些DNA的降解。
如需去除RNA，可在上述步骤完成后，加入4 μl 浓度为100 mg/ml 的RNase A溶液，震荡混匀，室温放置 5-10 分钟。
2：加入 200 μl 无水乙醇，涡旋震荡充分混匀。
第2步请注意：加入无水乙醇后可能会产生白色沉淀，不会影响后续实验。
3：将步骤 2 所得溶液(包括形成的沉淀)全部加入到已装入收集管的吸附柱(SpinColumns DM)中，若一次不能加完溶液，可分多次转入。12,000 rpm 离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
4：向吸附柱中加入 500 μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸 附柱重新放回收集管中。
5：向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
第5步请注意：如需进一步提高 DNA 纯度，可重复步骤5。
6：12,000 rpm 离心 2 分钟，倒掉收集管中废液。将吸附柱置于室温数分钟，以彻底晾干。
第6步请注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除，乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)。
7：将吸附柱置于一个新的离心管(自备)中，向吸附柱的中间部位悬空加入50-200μl Buffer GE或灭菌水，室温放置2-5 分钟，12,000 rpm 离心1分钟，收集DNA溶液，-20°C保存DNA。
第7步请注意：如果下游实验对pH值或EDTA敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其 pH 值在7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)，pH 值低于7.0时洗脱效率不高。
Buffer GE在65-70°C水浴预热，离心之前室温孵育5分钟可以增加产量;用另外的50-200 μl Buffer GE 或灭菌水 再次洗脱可以增加产量。
如果要提高DNA的终浓度，可将得到的溶液重新加入到吸附柱中，室温放置2-5分钟，12,000 rpm 离心 1 分钟;若洗脱体积小于 200 μl，可以增加DNA的终浓度，但可能会减少总产量。如果DNA的量小于1 μg，推荐用50 μl Buffer GE 或灭菌水洗脱。
因为保存在水中的 DNA 会受到酸性水解作用的影响，如需长期保存，推荐用Buffer GE洗脱并于-20°C保存。
1：处理材料
①：如果提取材料为哺乳动物抗凝血液(无核红细胞)，可直接向50-200μl新鲜或冷冻的抗凝血液样品中加入Buffer GTL补足至200μl。
②：如果提取材料为禽类，鸟类，两栖类或更低级生物的抗凝血液，其红细胞为有核细胞，取 5-10μl 新鲜或冷冻的抗凝血液样品，加入Buffer GTL补足至200μl。
③：贴壁培养的细胞应先处理为细胞悬液(最大提取量为5x106个细胞)，2000rpm(400xg)离心5分钟，弃尽上清，加200μlGTL，振荡至样品彻底悬浮。
第1步注意：如需去除RNA，可在上述步骤完成后，加入 4μl 浓度为100mg/ml的RNase A溶液，涡旋15秒，室温放置2分钟。
2：加入 20μl Proteinase K 溶液,混匀。
3：加入 200μl Buffer GL，涡旋振荡充分混匀，56℃ 水浴 10 分钟。
4：短暂离心以去除管盖内壁的水珠。加入 200μl 无水乙醇，涡旋振荡充分混匀，短暂离心。
第4步请注意：加入 Buffer GL 和无水乙醇后要立即涡旋震荡混匀。
加入Buffer GL和无水乙醇后可能会产生白色沉淀，不会影响后续实验。
一些组织在加入BufferGL和无水乙醇后可能形成溶胶状产物，此时推荐进行剧烈震荡或涡旋处理。
5：上一个步骤中所得溶液全部加入到已装入收集管的吸附柱(Spin Columns DM)中，若一次不能加完溶液，可分多次转入。12,000 rpm(约 13,400 xg) 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
6：向吸附柱中加入500μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
7：向吸附柱中加入 500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸 附柱重新放回收集管中。
第7步请注意：如需进一步提高 DNA 纯度，可重复步骤7。
8：12,000 rpm 离心 2 分钟，倒掉收集管中废液。将吸附柱置于室温数分钟，以彻底晾干。
第8步请注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除，乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)。
9：将吸附柱置于一个新的离心管(自备)中，向吸附柱的中间部位悬空加入 50-200μl Buffer GE或灭菌水，室温放置2-5 分钟，12000rpm 离心1分钟，收集DNA溶液，-20̊C保存DNA。
第9步请注意：如果下游实验对pH值或EDTA 敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其pH值在 7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)，pH 值低于7.0时洗脱效率不高。
Buffer GE在65-70℃ 水浴预热，离心之前室温孵育5分钟可以增加产量;用另外的50-200μl BufferGE或灭菌水再次洗脱可以增加产量。
如果要提高DNA的终浓度，可将得到的溶液重新加入到吸附柱中，室温放置2-5分钟，12,000 rpm离心1分钟;若洗脱体积小于200 μl，可以增加DNA的终浓度，但可能会减少总产量。如果DNA的量小于1μg，推荐用50μl Buffer GE或灭菌水洗脱。
因为保存在水中的DNA会受到酸性水解作用的影响，如需长期保存，推荐用Buffer GE洗脱并于-20 ℃ 保存。
二：动物组织基因组提取
1：材料处理，如果提取材料为动物组织，取25mg(脾组织用量应少于10 mg);如果材料为鼠尾，取一段长度为0.4-0.6 cm的大鼠鼠尾或两段长度为0.4-0.6 cm的小鼠鼠尾。
①：样本进行液氮研磨或切成小块后置于 1.5 ml 离心管中，加入 180 μl Buffer GTL，将不同样品做好标记。
②：若使用匀浆器处理样本，匀浆前向样本中加入不超过 80 μl Buffer GTL，匀浆后加入 100 μl Buffer GTL。
第1步请注意：确保各组织的量不要超出推荐范围。
组织样本在加入Buffer GTL之前用液氮研磨或加入Buffer GTL用匀浆器匀浆处理，可以增加裂解效率。
2：加入 20 μl Proteinase K，涡旋震荡使样品彻底混匀。56℃ 水浴，直至组织完全裂解，孵育过程中可每隔一段时间颠倒或震荡离 心管使样品分散。
第2步请注意：不同组织消化时间不同，通常1-3小时即可完成，鼠尾需要消化6-8小时，必要时过夜消化，不会影响后续操作。
如果孵育和涡旋震荡后仍然有胶状物质，延长56℃ 孵育时间或再加入 20 μl Proteinase K 消化。
如需去除RNA，可在上述步骤完成后，加入4μl的浓度为100mg/ml 的RNase A溶液，涡旋15秒，室温放置5-10 分钟。
3：加入200μl Buffer GL涡旋震荡充分混匀，70℃ 水浴10分钟。短暂离心后加入200μl无水乙醇，涡旋震荡充分混匀。
第3步请注意：加入 Buffer GL 和无水乙醇后要立即涡旋震荡混匀。
加入 Buffer GL 和无水乙醇后可能会产生白色沉淀，不会影响后续实验。一些组织(如脾，肺)在加入 Buffer GL 和无 水乙醇后可能形成溶胶状产物，此时推荐进行剧烈震荡或涡旋处理。
4：短暂离心，将步骤 3 所得溶液全部加入到已装入收集管的吸附柱(Spin Columns DM)中，若一次不能加完溶液，可分多次转入。 12,000 rpm(约 13,400xg )离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
5：向吸附柱中加入 500 μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
6：向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm。离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
7：12,000 rpm 离心 2 分钟，倒掉收集管中废液。将吸附柱置于室温数分钟，以彻底晾干。
第7步请注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除，乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切，PCR 等)。
8：将吸附柱置于一个新的离心管(自备)中，向吸附柱的中间部位悬空加入50-200μl Buffer GE或灭菌水，室温放置2-5分钟，12,000 rpm 离心1分钟，收集DNA 溶液，-20°C保存DNA。
第8步请注意：如果下游实验对pH值或 EDTA敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其pH值在 7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)，pH 值低于7.0时洗脱效率不高。
Buffer GE在65-70°C水浴预热，离心之前室温孵育5分钟可以增加产量;用另外的50-200 μl BufferGE 或灭菌水 再次洗脱可以增加产量。
如果要提高DNA的终浓度，可将得到的溶液重新加入到吸附柱中，室温放置2-5分钟，12,000 rpm 离心1分钟; 若洗脱体积小于200 μl，可以增加DNA的终浓度，但可能会减少总产量。如果DNA的量小于1 μg，推荐用50 μl Buffer GE或灭菌水洗脱。
因为保存在水中的DNA会受到酸性水解作用的影响，如需长期保存，推荐用Buffer GE洗脱并于-20°C 保存。
三：细菌基因组提取
1：细菌样本预处理
1a：革兰氏阴性菌
①：取细菌培养物 1-5 ml(106-108个细胞，最多不超过2×109个细胞)置于离心管(自备)中，12,000 rpm(~13,400xg)离心1分钟，尽量吸净上清。
②：向沉淀中加入 180 μl Buffer GTL，振荡使菌体重悬。
③：加入20 μl Proteinase K，涡旋混匀，56°C 孵育，直至菌体完全裂解，孵育过程中每隔一段时间颠倒或震荡离心管使样本分散。
第③步请注意：如需去除 RNA，可在上述步骤完成后，加入4 μl浓度为100 mg/ml的RNase A溶液，震荡混匀，室温放置5-10分钟。
④：加入 200 μl Buffer GL，涡旋震荡混匀。
1b：革兰氏阳性菌
①：取细菌培养物 1-5 ml(106-108个细胞，最多不超过2×109个细胞)置于离心管(自备)中，12,000 rpm(~13,400xg)离心1分钟，尽量吸净上清。
②：加入 180 μl Enzymatic Lysis Buffer(自备)使菌体重悬。
③：37°C 孵育 30 分钟。
④：加入20 μl Proteinase K 涡旋震荡，充分混匀。加入200 μl Buffer GL，涡旋震荡混匀。56°C孵育30分钟。
第④请注意：如果需要，95°C 孵育15分钟可以使病原体失活，但是95°C 孵育会造成一些DNA的降解。
如需去除RNA，可在上述步骤完成后，加入4 μl 浓度为100 mg/ml 的RNase A溶液，震荡混匀，室温放置 5-10 分钟。
2：加入 200 μl 无水乙醇，涡旋震荡充分混匀。
第2步请注意：加入无水乙醇后可能会产生白色沉淀，不会影响后续实验。
3：将步骤 2 所得溶液(包括形成的沉淀)全部加入到已装入收集管的吸附柱(SpinColumns DM)中，若一次不能加完溶液，可分多次转入。12,000 rpm 离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
4：向吸附柱中加入 500 μl Buffer GW1(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心 1 分钟，倒掉收集管中的废液，将吸 附柱重新放回收集管中。
5：向吸附柱中加入500μl Buffer GW2(使用前检查是否已加入无水乙醇)，12,000 rpm 离心1分钟，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。
第5步请注意：如需进一步提高 DNA 纯度，可重复步骤5。
6：12,000 rpm 离心 2 分钟，倒掉收集管中废液。将吸附柱置于室温数分钟，以彻底晾干。
第6步请注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的乙醇去除，乙醇的残留会影响后续的酶促反应(酶切、PCR 等)。
7：将吸附柱置于一个新的离心管(自备)中，向吸附柱的中间部位悬空加入50-200μl Buffer GE或灭菌水，室温放置2-5 分钟，12,000 rpm 离心1分钟，收集DNA溶液，-20°C保存DNA。
第7步请注意：如果下游实验对pH值或EDTA敏感，可以用灭菌水洗脱。洗脱液的pH值对洗脱效率有很大影响，若用水做洗脱液应保证其 pH 值在7.0-8.5(可以用NaOH将水的pH值调到此范围)，pH 值低于7.0时洗脱效率不高。
Buffer GE在65-70°C水浴预热，离心之前室温孵育5分钟可以增加产量;用另外的50-200 μl Buffer GE 或灭菌水 再次洗脱可以增加产量。
如果要提高DNA的终浓度，可将得到的溶液重新加入到吸附柱中，室温放置2-5分钟，12,000 rpm 离心 1 分钟;若洗脱体积小于 200 μl，可以增加DNA的终浓度，但可能会减少总产量。如果DNA的量小于1 μg，推荐用50 μl Buffer GE 或灭菌水洗脱。
因为保存在水中的 DNA 会受到酸性水解作用的影响，如需长期保存，推荐用Buffer GE洗脱并于-20°C保存。
产品描述：
本试剂盒适合于从新鲜或冷冻的动物组织(比如鼠尾、肝脏等)，细胞，血液，细菌等多种样品中提取高纯度总 DNA。
组分：
| 组分名称 | 50T |
| Buffer GTL | 15mL |
| Buffer GL | 15mL |
| Buffer GW1(concentrate) | 13mL |
| Buffer GW2(concentrate) | 15mL |
| Buffer GE | 15mL |
| Proteinase K* | 1mL |
| Spin Columns DM with Collection Tubes | 50个 |
注意事项：
1：样品应避免反复冻融，否则会导致提取DNA片段较小且提取量下降。
2：如果提取次生代谢产物大量积累或细胞壁厚的细菌培养物的基因组，建议在对数生长期早期收集样品。
3：第一次使用前应按试剂瓶标签的说明在Buffer GW1和Buffer GW2中加入无水乙醇。
4：使用前请检查Buffer GTL和Buffer GL是否出现结晶或沉淀，如有结晶或沉淀，请将Buffer GL和 Buffer GTL于 56°C水浴重新溶解。
5：如果下游实验对RNA污染比较敏感，可以在加入Buffer GL前加入4μl DNase-Free的 RNase A(100mg/ml)，RNase A本试剂盒并未提供，可单独订购。
2：如果提取次生代谢产物大量积累或细胞壁厚的细菌培养物的基因组，建议在对数生长期早期收集样品。
3：第一次使用前应按试剂瓶标签的说明在Buffer GW1和Buffer GW2中加入无水乙醇。
4：使用前请检查Buffer GTL和Buffer GL是否出现结晶或沉淀，如有结晶或沉淀，请将Buffer GL和 Buffer GTL于 56°C水浴重新溶解。
5：如果下游实验对RNA污染比较敏感，可以在加入Buffer GL前加入4μl DNase-Free的 RNase A(100mg/ml)，RNase A本试剂盒并未提供，可单独订购。
保存条件：
室温 12个月
自备试剂：
无水乙醇(E20003)
Enzymatic Lysis Buffer(提取革兰氏阳性菌基因组 DNA 时须准备,配方：20 mM Tris，pH 8.0;2 mM，EDTA-Na2;1.2%Triton X-100;终浓度为 20mg/ml 的溶菌酶(Lysozyme)。
Enzymatic Lysis Buffer(提取革兰氏阳性菌基因组 DNA 时须准备,配方：20 mM Tris，pH 8.0;2 mM，EDTA-Na2;1.2%Triton X-100;终浓度为 20mg/ml 的溶菌酶(Lysozyme)。
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
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质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
