产品简介：
多种成分均可以从细胞中提取总蛋白，例如 Triton、SDS、NP-40 等。SDS 裂解液 (SDS Lysis Buffer)是一种枀其强烈的细胞组织快速裂解液并获得总蛋白质。其裂解液强度大于NP-40 裂解液、RIPA 裂解液(弱)、RIPA 裂解液(中)、通用细胞裂解液、Western 及 IP 细胞裂解液，所获得的蛋白质可以用于 Western、染色质免疫共沉淀(ChIP)等。
SDS Lysis Buffer 主要由 Tris-HCl、NaCl、SDS 等组成，并含有多种蛋白酶抑制剂成分，可以有效抑制蛋白的降解，并维持原有的蛋白间相互作用。
操作步骤：
(一)贴壁培养细胞
1、取 SDS Lysis Buffe 室温溶解混匀，使用前取适量裂解液加入 PMSF，使终浓度为 1mM。
2、去除贴壁细胞的培养液，用 PBS、NS 或无血清培养液清洗 1 次，低速离心，弃上清，留取沉淀。
3、按照 6 孔板每孔加入 150～250μl 含有 PMSF 的裂解液的比例加入 SDS Lysis Buffer 。移液器轻轻吹打，使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液作用于细胞 1～3s 内，细胞就会被裂解。如果是所提蛋白样品用于 CHIP, 应置于冰上或 4℃裂解 15～30min。通常 6孔板每孔细胞加入 150μl 裂解液已经足够，但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到 200～250μl。
4、10000～12000g，4℃离心 5～10min(如无低温离心机，室温下离心亦可)，取上清。
5、进行后续的 Western、染色质免疫共沉淀(ChIP)等操作。
(二)悬浮培养细胞
1、取 SDS Lysis Buffer 置于室温溶解混匀后，使用前取适量裂解液加入 PMSF，使其最终浓度为 1mM。
2、低速离心悬浮细胞，弃上清，收集沉淀。
3、用手指轻弹细胞，使其松散。按照 6 孔板每孔细胞加入 150～250μl 含有 PMSF 的裂解液的比例，加入 SDS Lysis Buffer。通常 6 孔板每孔细胞加入 150μl 裂解液已经足够，但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到 200～250μl。再用手指轻弹以充分裂解细胞，充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。通常裂解液作用于细胞 1～3s 内，细胞就会被裂解。如果是所提蛋白样品用于 CHIP, 置于冰上或 4℃裂解 15～30min。
4、10000～12000g，4℃离心 5～10min(如无低温离心机，室温下离心亦可)，取上清。
5、进行后续的 Western、染色质免疫共沉淀(ChIP)等操作。
(三)组织样本
1、取 SDS Lysis Buffer 置于室温溶解混匀，使用前取适量裂解液加入 PMSF，使其最终浓度为 1mM。
2、把组织剪切成细小的碎片，越小越好。
3、取在液氮或超低温冰箱中冷冻 30min 以上的组织，迅速用液氮研磨，研磨过程尽量控制在 1～2min 之内，以减少蛋白的降解。
4、按 20mg 组织加入 150～250μl 裂解液的比例加入含有 PMSF 的裂解液。冰上或 4℃裂解 15～30min。如果是所提蛋白样品用于 CHIP,置于冰上或 4℃继续裂解 10～20min。
5、步骤 3、4 亦可以采用如下过程：按照每 20mg 组织加入 150～250μl 裂解液的比例加入含有 PMSF 的 SDS Lysis Buffer。用玻璃匀浆器或组织研磨器匀浆，直至充分裂解，过程尽量控制在1～2min 之内，以减少蛋白的降解。如果是所提蛋白样品用于CHIP, 应置于冰上或 4℃继续裂解 10～20min。
6、10000～12000g，4℃离心 5～10min(如无低温离心机，室温下离心亦可)，取上清。
7、进行后续的 Western、染色质免疫共沉淀(ChIP)等操作。
1、取 SDS Lysis Buffe 室温溶解混匀，使用前取适量裂解液加入 PMSF，使终浓度为 1mM。
2、去除贴壁细胞的培养液，用 PBS、NS 或无血清培养液清洗 1 次，低速离心，弃上清，留取沉淀。
3、按照 6 孔板每孔加入 150～250μl 含有 PMSF 的裂解液的比例加入 SDS Lysis Buffer 。移液器轻轻吹打，使裂解液和细胞充分接触。通常裂解液作用于细胞 1～3s 内，细胞就会被裂解。如果是所提蛋白样品用于 CHIP, 应置于冰上或 4℃裂解 15～30min。通常 6孔板每孔细胞加入 150μl 裂解液已经足够，但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到 200～250μl。
4、10000～12000g，4℃离心 5～10min(如无低温离心机，室温下离心亦可)，取上清。
5、进行后续的 Western、染色质免疫共沉淀(ChIP)等操作。
(二)悬浮培养细胞
1、取 SDS Lysis Buffer 置于室温溶解混匀后，使用前取适量裂解液加入 PMSF，使其最终浓度为 1mM。
2、低速离心悬浮细胞，弃上清，收集沉淀。
3、用手指轻弹细胞，使其松散。按照 6 孔板每孔细胞加入 150～250μl 含有 PMSF 的裂解液的比例，加入 SDS Lysis Buffer。通常 6 孔板每孔细胞加入 150μl 裂解液已经足够，但如果细胞密度非常高可以适当加大裂解液的用量到 200～250μl。再用手指轻弹以充分裂解细胞，充分裂解后应没有明显的细胞沉淀。通常裂解液作用于细胞 1～3s 内，细胞就会被裂解。如果是所提蛋白样品用于 CHIP, 置于冰上或 4℃裂解 15～30min。
4、10000～12000g，4℃离心 5～10min(如无低温离心机，室温下离心亦可)，取上清。
5、进行后续的 Western、染色质免疫共沉淀(ChIP)等操作。
(三)组织样本
1、取 SDS Lysis Buffer 置于室温溶解混匀，使用前取适量裂解液加入 PMSF，使其最终浓度为 1mM。
2、把组织剪切成细小的碎片，越小越好。
3、取在液氮或超低温冰箱中冷冻 30min 以上的组织，迅速用液氮研磨，研磨过程尽量控制在 1～2min 之内，以减少蛋白的降解。
4、按 20mg 组织加入 150～250μl 裂解液的比例加入含有 PMSF 的裂解液。冰上或 4℃裂解 15～30min。如果是所提蛋白样品用于 CHIP,置于冰上或 4℃继续裂解 10～20min。
5、步骤 3、4 亦可以采用如下过程：按照每 20mg 组织加入 150～250μl 裂解液的比例加入含有 PMSF 的 SDS Lysis Buffer。用玻璃匀浆器或组织研磨器匀浆，直至充分裂解，过程尽量控制在1～2min 之内，以减少蛋白的降解。如果是所提蛋白样品用于CHIP, 应置于冰上或 4℃继续裂解 10～20min。
6、10000～12000g，4℃离心 5～10min(如无低温离心机，室温下离心亦可)，取上清。
7、进行后续的 Western、染色质免疫共沉淀(ChIP)等操作。
组分：
| 产品名称 | 规格 | Storage |
| SDS裂解液 | 100ml | -20℃ |
注意事项：
1、去除贴壁细胞的培养液后，如果血清中的蛋白没有干扰，可以丌用清洗。
2、如果裂解丌充分可以适当增加裂解液的用量，如果需要高浓度的蛋白样品，可以适当减少裂解液的用量。
3、在培养细胞的裂解中，如果细胞量较多，必需分装成 50-100 万细胞/离心管，然后再裂解。少量的细胞由于裂解液容易和细胞充分接触，相对比较容易裂解充分。
4、如果组织样品本身非常细小，可以适当剪切后直接加入裂解液裂解，通过强烈 Vortex使样品裂解充分。然后同样离心取上清，用于后续实验。直接裂解的优点是比较方便，丌必使用匀浆器，缺点是丌如使用匀浆器那样裂解得比较充分。
5、溶解 SDS Lysis Buffer 时，应尽量缩短溶解时间，避免裂解液中的有效成分失效。
6、细胞裂解的操作步骤，应置于冰上或 4℃进行。
2、如果裂解丌充分可以适当增加裂解液的用量，如果需要高浓度的蛋白样品，可以适当减少裂解液的用量。
3、在培养细胞的裂解中，如果细胞量较多，必需分装成 50-100 万细胞/离心管，然后再裂解。少量的细胞由于裂解液容易和细胞充分接触，相对比较容易裂解充分。
4、如果组织样品本身非常细小，可以适当剪切后直接加入裂解液裂解，通过强烈 Vortex使样品裂解充分。然后同样离心取上清，用于后续实验。直接裂解的优点是比较方便，丌必使用匀浆器，缺点是丌如使用匀浆器那样裂解得比较充分。
5、溶解 SDS Lysis Buffer 时，应尽量缩短溶解时间，避免裂解液中的有效成分失效。
6、细胞裂解的操作步骤，应置于冰上或 4℃进行。
保存条件：
-20℃,12个月
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
