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（ 母液浓度为 40 mg/mL ）, 如您需要配置的浓度超过该产品的溶解度，请先与我们客服联系。熔点：
120°C
外观与性状：
深红色粉末
包装规格：
25g 100g in glass bottle
产品简介：
一种脂溶性重氮染料，最大吸收波长为 518 nm。Oil Red O 染色中性脂和胆固醇酯，但不染色生物膜。Oil Red O 在小鼠肝活检中可用于检测和定量肝脂肪变性。Oil Red O 染色可以有效地观察代谢疾病发生和进展时组织发生的根本变化。
溶解性：
易溶于苯，溶于乙醇(呈浅黄红色)和丙酮。在浓硫酸中呈浅蓝绿色，稀释时产生蓝紫色沉淀。最大吸收波长518(359)nm.
储备液保存：
-80°C, 6 months;
-20°C, 1 month。
(protect from light, stored under nitrogen)
-20°C, 1 month。
(protect from light, stored under nitrogen)
体外研究：
Oil Red O (ORO) 染色脂质体的完整实验步骤：
一、制备 ORO 储备液
1、在 250 mL 瓶中加入 500 mg ORO 粉末和 100 mL 100% 异丙醇，充分混合。
2、配制完成后，将溶液密封保存，避免光照。
二、制备 ORO 工作液
1、将 ORO 储存液用水稀释至 60%异丙醇（体积比为 3:2）。
2、使用前，用 0.2 μm 醋酸纤维素无菌注射器过滤器过滤工作液。
注：为获得最佳溶液质量，建议提前一天配制 ORO 工作液并混合过夜。若需当天使用，需将稀释后的溶液在摇床上混合至少 2 小时。摇动前用石蜡膜包裹离心管以防泄漏。
三、准备样品
1、在 20°C 条件下，将线虫培养于接种了 OP50 大肠杆菌（对数后期）的线虫生长培养基（NGM）上，直至目标发育阶段。 2、向培养皿中加入 1 mL PBST 溶液（含 0.01% Triton X-100），轻轻摇晃使线虫脱离培养基。倾斜培养皿并用 1 mL PBST 冲洗，将线虫悬液转移至 1.5 mL 离心管。
3、以 560 × g 离心 1 分钟，弃上清，保留沉淀。重复用 1 mL PBST 洗涤三次，最后弃上清仅保留100 μL。
4、向线虫沉淀中加入 600 μL 40% 异丙醇，室温下摇动孵育 3 分钟。
5、以 560 × g 离心 30 秒，弃上清仅保留 100 μL，注意勿扰动线虫沉淀。
注：若进行高通量染色，需增加 PBST 体积。线虫在 PBST 中洗涤时间不得超过 15 分钟。若上清中仍有细菌，需额外洗涤。使用摇床或振荡器进行 40% 异丙醇孵育，确保样品充分混匀。
四、染色脂质体
1、向每份样品中加入 600 μL ORO 工作液，颠倒离心管三次以充分混合线虫与染色液。2、室温下以 30 rpm 旋转孵育 2 小时。
3、以 560 × g 离心 1 分钟，弃上清仅保留 100 μL。
4、用 600 μL PBST 重悬样品，以 30 rpm 旋转孵育 30 分钟以去除多余染色液。
5、以 560 × g 离心 1 分钟，弃上清仅保留 50 μL。
6、为更好区分线虫的生殖细胞和肠道细胞核，可在每 1 mL ORO 工作液中加入 1 μL DAPI，染色2 小时后制片成像。肠道细胞核较大，生殖腺可通过发育中的生殖细胞识别。
注：ORO 染色后，线虫可能黏附于离心管壁而无法形成明显沉淀。若发生此情况，可再次离心或静置至少10分钟使线虫沉降。
五、制片
1、将线虫沉淀重悬于剩余上清液中，充分混匀。
2、取 5 μL 线虫悬液滴于载玻片，小心盖上盖玻片以避免气泡。
3、用指甲油密封盖玻片边缘后进行成像。
注：固定和染色后的线虫可能僵硬，难以吸取。建议剪去移液器吸头尖端以扩大孔径。若无法立即成像，可将载玻片存放于 4°C 的离心管架中，最长 24 小时。
六、成像
1、使用具备彩色成像功能的显微镜相机拍摄 ORO 染色线虫。
2、用 5X 物镜拍摄以涵盖多个线虫视野，切换至 10X 物镜以观察单个线虫细节。
3、将图像以 TIF 格式导出以避免压缩导致数据丢失。
注：若使用 ORO+DAPI 染色，需切换至荧光成像模式。
七、结果分析
1、将图像导入 Image J。若文件格式不被识别，可通过插件菜单中的 Bio-Formats 功能读取。
2、在图像菜单的“堆栈（Stacks）”功能下，使用“Images-to-Stack”将多张图像合并为堆栈以便比较。
3、调整“亮度/对比（Brightness/Contrast）”以增强脂滴可见性。
4、根据脂质在全身或特定组织的积累情况对图像进行分类。
5、为评估脂质定位并识别非特异性伪影，可在图像菜单的“颜色（Color）”中选择“Stack to RGB”，分别显示 RGB 通道信号。
一、制备 ORO 储备液
1、在 250 mL 瓶中加入 500 mg ORO 粉末和 100 mL 100% 异丙醇，充分混合。
2、配制完成后，将溶液密封保存，避免光照。
二、制备 ORO 工作液
1、将 ORO 储存液用水稀释至 60%异丙醇（体积比为 3:2）。
2、使用前，用 0.2 μm 醋酸纤维素无菌注射器过滤器过滤工作液。
注：为获得最佳溶液质量，建议提前一天配制 ORO 工作液并混合过夜。若需当天使用，需将稀释后的溶液在摇床上混合至少 2 小时。摇动前用石蜡膜包裹离心管以防泄漏。
三、准备样品
1、在 20°C 条件下，将线虫培养于接种了 OP50 大肠杆菌（对数后期）的线虫生长培养基（NGM）上，直至目标发育阶段。 2、向培养皿中加入 1 mL PBST 溶液（含 0.01% Triton X-100），轻轻摇晃使线虫脱离培养基。倾斜培养皿并用 1 mL PBST 冲洗，将线虫悬液转移至 1.5 mL 离心管。
3、以 560 × g 离心 1 分钟，弃上清，保留沉淀。重复用 1 mL PBST 洗涤三次，最后弃上清仅保留100 μL。
4、向线虫沉淀中加入 600 μL 40% 异丙醇，室温下摇动孵育 3 分钟。
5、以 560 × g 离心 30 秒，弃上清仅保留 100 μL，注意勿扰动线虫沉淀。
注：若进行高通量染色，需增加 PBST 体积。线虫在 PBST 中洗涤时间不得超过 15 分钟。若上清中仍有细菌，需额外洗涤。使用摇床或振荡器进行 40% 异丙醇孵育，确保样品充分混匀。
四、染色脂质体
1、向每份样品中加入 600 μL ORO 工作液，颠倒离心管三次以充分混合线虫与染色液。2、室温下以 30 rpm 旋转孵育 2 小时。
3、以 560 × g 离心 1 分钟，弃上清仅保留 100 μL。
4、用 600 μL PBST 重悬样品，以 30 rpm 旋转孵育 30 分钟以去除多余染色液。
5、以 560 × g 离心 1 分钟，弃上清仅保留 50 μL。
6、为更好区分线虫的生殖细胞和肠道细胞核，可在每 1 mL ORO 工作液中加入 1 μL DAPI，染色2 小时后制片成像。肠道细胞核较大，生殖腺可通过发育中的生殖细胞识别。
注：ORO 染色后，线虫可能黏附于离心管壁而无法形成明显沉淀。若发生此情况，可再次离心或静置至少10分钟使线虫沉降。
五、制片
1、将线虫沉淀重悬于剩余上清液中，充分混匀。
2、取 5 μL 线虫悬液滴于载玻片，小心盖上盖玻片以避免气泡。
3、用指甲油密封盖玻片边缘后进行成像。
注：固定和染色后的线虫可能僵硬，难以吸取。建议剪去移液器吸头尖端以扩大孔径。若无法立即成像，可将载玻片存放于 4°C 的离心管架中，最长 24 小时。
六、成像
1、使用具备彩色成像功能的显微镜相机拍摄 ORO 染色线虫。
2、用 5X 物镜拍摄以涵盖多个线虫视野，切换至 10X 物镜以观察单个线虫细节。
3、将图像以 TIF 格式导出以避免压缩导致数据丢失。
注：若使用 ORO+DAPI 染色，需切换至荧光成像模式。
七、结果分析
1、将图像导入 Image J。若文件格式不被识别，可通过插件菜单中的 Bio-Formats 功能读取。
2、在图像菜单的“堆栈（Stacks）”功能下，使用“Images-to-Stack”将多张图像合并为堆栈以便比较。
3、调整“亮度/对比（Brightness/Contrast）”以增强脂滴可见性。
4、根据脂质在全身或特定组织的积累情况对图像进行分类。
5、为评估脂质定位并识别非特异性伪影，可在图像菜单的“颜色（Color）”中选择“Stack to RGB”，分别显示 RGB 通道信号。
保存条件：
室温
注意事项：
1、为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
2、以上信息仅做参考交流之用。
2、以上信息仅做参考交流之用。
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
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体内配方的制备方法: 取 50μLDMSO 母液，添加 300 μLPEG300 混匀澄清，再加 50μLTween80, 混匀澄清，再加 600μLSaline/PBS/ddH2O 混匀澄清
方案所需的各种助溶剂如： DMSO ， PEG300 / PEG400 ， Tween 80 ， SBE-β-CD ， 玉米油 等， 均可点击跳转或在网站搜索购买。
母液，添加 300 μLPEG300 混匀澄清，再加 50μLTween80, 混匀澄清，再加 600μLSaline/PBS/ddH2O 混匀澄清方案所需的各种助溶剂如： DMSO ， PEG300 / PEG400 ， Tween 80 ， SBE-β-CD ， 玉米油 等， 均可点击跳转或在网站搜索购买。
以上为“动物实验计算换算器”的使用方法举例，并不是具体某个试剂的配制，请根据您的实验动物和给药方式选择适当的溶解方案。
计算结果:
工作液浓度： mg/ml；
DMSO母液配制方法： mg 药物溶于 μL DMSO溶液（母液浓度 mg/mL，
体内配方配制方法：取 μL DMSO母液，加入 μL PEG300，混匀澄清后加入μL Tween 80，混匀澄清后加入 μL Saline/PBS/ddH2O，混匀澄清。
1. 首先保证母液是澄清的；
2.
一定要按照顺序依次将溶剂加入，进行下一步操作之前必须保证上一步操作得到的是澄清的溶液，可采用涡旋、超声或水浴加热等物理方法助溶。
剂量转换
对于不同动物的给药剂量换算，您也可以参考 更多
客户发表文献
