外观与性状：
白色球状凝胶
包装规格：
25mL 100mL 500mL in poly bottle
产品简介：
CM-琼脂糖凝胶 FF 是将羧甲基键合在高流速琼脂糖凝胶上形成的一种弱阳离子交换介质。广 泛用于生物制药和生物工程下游蛋白质、核酸及多肽的离子交换制备。
本品为白色球状凝胶，无嗅、无味、无肉眼可见杂质。
本产品具有高化学稳定性、高流速、高载量、好的机械性能、可在位清洗、多次重复使用等特点，非特异性吸附低，回收率高，适用于工业规模生产，适用于在pH工作范围内可形成正离子的生物大分子的分离纯化，广泛用于生物制药和生物工程下游蛋白质、核酸及多肽的离子交换制备。
亲和填料特性：(检测条件: 层析柱 10mm×300mm *柱床高15cm，25°C，流动相为0.1mol/LNaCl。)
项目：指标
离子交换基团：-O-CH2COO-
离子交换类型：弱阳离子，可交换离子 Na+
基质：6% 交联琼脂糖
蛋白质吸附容量：60mg溶菌酶/mL 介质
总离子交换量：0.09 - 0.13mmol/mL 介质
形状：球形
粒径：45 - 165 μm
流速：300 - 600 cm/h;最大流速750 cm/h
工作温度：4 - 40°C
耐压：0.3MPa
耐热：pH7水中 120°C30min
pH 值稳定性：2-14 (短时间，在位清洗) 4-13(长时间)
pH 工作范围：6 - 10
本品为白色球状凝胶，无嗅、无味、无肉眼可见杂质。
本产品具有高化学稳定性、高流速、高载量、好的机械性能、可在位清洗、多次重复使用等特点，非特异性吸附低，回收率高，适用于工业规模生产，适用于在pH工作范围内可形成正离子的生物大分子的分离纯化，广泛用于生物制药和生物工程下游蛋白质、核酸及多肽的离子交换制备。
亲和填料特性：(检测条件: 层析柱 10mm×300mm *柱床高15cm，25°C，流动相为0.1mol/LNaCl。)
项目：指标
离子交换基团：-O-CH2COO-
离子交换类型：弱阳离子，可交换离子 Na+
基质：6% 交联琼脂糖
蛋白质吸附容量：60mg溶菌酶/mL 介质
总离子交换量：0.09 - 0.13mmol/mL 介质
形状：球形
粒径：45 - 165 μm
流速：300 - 600 cm/h;最大流速750 cm/h
工作温度：4 - 40°C
耐压：0.3MPa
耐热：pH7水中 120°C30min
pH 值稳定性：2-14 (短时间，在位清洗) 4-13(长时间)
pH 工作范围：6 - 10
操作步骤：
一：装柱
1：让所有的材料和试剂达到室温。配制初始缓冲液(平衡液)和洗脱缓冲液。
2：根据柱子大小取所需量的凝胶，清洗掉20%乙醇，抽干，用初始缓冲液(按凝胶:缓冲液=3: 1的比例)配成匀浆。
3：将柱内及柱子底端用水或缓冲液润湿并保持一小段液位(液面略高于滤膜)，务必使底端无气泡。
4：用玻璃棒引导匀浆沿着柱内壁一次性倒入柱内，注意勿使产生气泡。打开柱子出液口，使凝胶在柱内自由沉降，连结好柱子顶端柱头。
5：打开蠕动泵，让缓冲液用使用时流速的1.33倍的流速流过，使柱床稳定。用2-3倍柱体积的缓冲液平衡柱子。
二：平衡
让平衡缓冲液以一定流速流过柱子，到流出液电导和pH不变。平衡液是低浓度的缓冲溶液， 如NaAC、PBS等。
三：上样
1：样品用平衡液配制，浑浊的样品要离心和过滤后上样。盐浓度太大的样品处理后再配制。
2：一般情况是让目标产品结合在柱子上，用平衡液洗去杂质，再选择一种洗脱液洗下目标产品。
3：介质对样品组分吸附的程度取决于样品的带电性质、流动相的离子强度和pH 值。盐浓度小， 介质对样品组分吸附较牢。用CM介质时，推荐的pH 值是小于目标产品等电点1个单位。
四：洗脱
CM 介质可用增大盐浓度或增大pH 值进行洗脱，常用增大盐浓度的办法洗脱。
五：再生
一般用高盐浓度的缓冲液(含1-2mol/L NaCl)洗或增大pH洗10倍以上柱体积，接着用结合蛋白的平衡液洗到平衡，可再次使用。若有失活蛋白质或脂类物质在再生时洗不掉，可用在位清洗(CIP)除去。
六：在位清洗
1：对于以离子键结合上去的蛋白，可以用2M NaCl 去除。
2：对沉淀蛋白、对以疏水性结合的蛋白或脂类，可用1M NaOH去除。
3：对强疏水性结合的蛋白、脂类等，用4-10 倍柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗，但要注意有机溶剂的浓度以梯度的方式逐渐增加，否则容易产生气泡。清洗完毕后，用至少3倍缓冲液平衡柱子。
七：注意
在装柱、使用和保存柱子的时候，要避免柱子流干，气泡进入。
八：去热源：用0.5M 的NaOH 清洗柱子5-6 小时或用0.1M 的NaOH 清洗24 小时。或用以下方法步骤去除:
1：2倍柱体积的70%乙醇。
2：2倍柱体积50mM Tris-HCl pH7.5。
3：1倍柱体积4M尿素。
4：3 倍柱体积的Tris 缓冲液+0.1M NaCl。
注意:以上缓冲液都在无热源的双蒸水中配制。
九：消毒
用0.5-1M NaOH 室温下洗8-10 倍柱体积，初始缓冲液平衡柱子。
十：灭菌
置介质于高压灭菌锅中120°C下30分钟。
1：让所有的材料和试剂达到室温。配制初始缓冲液(平衡液)和洗脱缓冲液。
2：根据柱子大小取所需量的凝胶，清洗掉20%乙醇，抽干，用初始缓冲液(按凝胶:缓冲液=3: 1的比例)配成匀浆。
3：将柱内及柱子底端用水或缓冲液润湿并保持一小段液位(液面略高于滤膜)，务必使底端无气泡。
4：用玻璃棒引导匀浆沿着柱内壁一次性倒入柱内，注意勿使产生气泡。打开柱子出液口，使凝胶在柱内自由沉降，连结好柱子顶端柱头。
5：打开蠕动泵，让缓冲液用使用时流速的1.33倍的流速流过，使柱床稳定。用2-3倍柱体积的缓冲液平衡柱子。
二：平衡
让平衡缓冲液以一定流速流过柱子，到流出液电导和pH不变。平衡液是低浓度的缓冲溶液， 如NaAC、PBS等。
三：上样
1：样品用平衡液配制，浑浊的样品要离心和过滤后上样。盐浓度太大的样品处理后再配制。
2：一般情况是让目标产品结合在柱子上，用平衡液洗去杂质，再选择一种洗脱液洗下目标产品。
3：介质对样品组分吸附的程度取决于样品的带电性质、流动相的离子强度和pH 值。盐浓度小， 介质对样品组分吸附较牢。用CM介质时，推荐的pH 值是小于目标产品等电点1个单位。
四：洗脱
CM 介质可用增大盐浓度或增大pH 值进行洗脱，常用增大盐浓度的办法洗脱。
五：再生
一般用高盐浓度的缓冲液(含1-2mol/L NaCl)洗或增大pH洗10倍以上柱体积，接着用结合蛋白的平衡液洗到平衡，可再次使用。若有失活蛋白质或脂类物质在再生时洗不掉，可用在位清洗(CIP)除去。
六：在位清洗
1：对于以离子键结合上去的蛋白，可以用2M NaCl 去除。
2：对沉淀蛋白、对以疏水性结合的蛋白或脂类，可用1M NaOH去除。
3：对强疏水性结合的蛋白、脂类等，用4-10 倍柱体积的70%乙醇或30%异丙醇清洗，但要注意有机溶剂的浓度以梯度的方式逐渐增加，否则容易产生气泡。清洗完毕后，用至少3倍缓冲液平衡柱子。
七：注意
在装柱、使用和保存柱子的时候，要避免柱子流干，气泡进入。
八：去热源：用0.5M 的NaOH 清洗柱子5-6 小时或用0.1M 的NaOH 清洗24 小时。或用以下方法步骤去除:
1：2倍柱体积的70%乙醇。
2：2倍柱体积50mM Tris-HCl pH7.5。
3：1倍柱体积4M尿素。
4：3 倍柱体积的Tris 缓冲液+0.1M NaCl。
注意:以上缓冲液都在无热源的双蒸水中配制。
九：消毒
用0.5-1M NaOH 室温下洗8-10 倍柱体积，初始缓冲液平衡柱子。
十：灭菌
置介质于高压灭菌锅中120°C下30分钟。
注意事项：
产品应密封贮存在4-25°C(保存溶液为20%乙醇)，通风、干燥、清洁的地方，不能冷冻。 用过的柱子贮存在4°C(20%乙醇)。避免与氧化剂接触;避免在pH< 4的环境中长时间暴露(一周，20°C)。
保存条件：
2-8℃
UN码：
HazardClass：
危害声明：
安全说明：
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献
本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系，公式为：
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)
摩尔浓度计算公式
用本工具协助配置特定浓度的溶液，使用的计算公式为：
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积
稀释公式
稀释公式一般简略地表示为：C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )
