中文名称: 核酸染料red 热销 促销 买十赠三
英文名称: 核酸染料red
CAS No:
PS0533 核酸染料red 10000× in DMSO (psaitong)
产品简介:
一种具有凝胶染色特性,并可替换高毒性染色剂溴化乙锭(EB)的红色荧光核酸染色剂。Gelred 与 EB 有着相同的光谱特性,可以在不改变任何成像系统的情况下用来替换 EB。本产品为 10000X in DMSO 为浓缩的 GelRed 溶液。用于前染时,可稀释 10,000 倍后使用;用于后染时,建议稀释 3300 倍后使用
操作步骤:
一、胶染法(前染法)(用法同 EB)
1.按常规操作,制备琼脂糖凝胶,加入浓缩的 10000X Gelred,使其在凝胶中的终浓度为 1X Gelred(比 如,制备 100ml 凝胶,加入染料 5μl-10μl,可根据实际情况调整用量),轻轻摇匀,倒胶。
2. 因为非常灵敏,电泳过程中 DNA marker 上样量只需 1-2ul,而不是 EB 电泳中的 5ul,请严控 DNAmarker 上样量。
3. 按常规方法电泳,观测结果。
二、泡染法(后染法)
1.按照常规方法进行电泳。
2.用 dH2O 将 10000X Gelred 浓缩液稀释约 3300 倍到 0.1M 的 NaCl 中,制成 3×染色液。(比如,将 15μl 10000× Gelred Plus 浓缩液和 5ml 1M NaCl 加到 45ml dH2O 中)。
3.将凝胶小心放入合适的容器中,缓慢加入足量的 3×染色液浸没胶。室温振荡染色约 10-30min,最 佳染色时间根据凝胶厚度及琼脂糖浓度不同而略有不同。对于 3.5-10%丙烯酰胺胶,染色时间通常介 于 30min 到 1 小时。然后观测结果
附后染胶标准操作流程:
核酸电泳后染胶因为污染区域小,污染操作可控,越来越得到实验室的接受和采用。
标准操作步骤(以配 100ml 1%的琼脂糖为例):
1、称 1g 琼脂糖,量取 100m l 1xTAE(或 1x TBE)电泳缓冲液, 依次倒入一个三角瓶中。
2、在微波炉中化胶煮沸致琼脂糖完全融化。
3、取出静置 5 分钟,待胶液温度降至 50 度,将胶液倒入制胶模上。
4、20 分钟后待胶完全成型,取出放入电泳槽。
5、将 PCR 产物或者其他 DNA 样品和上样缓冲液混合,逐一上样。
6、电泳 20-30 分钟,根据溴酚蓝位置判断电泳到合适时间,停止电泳。
7、将跑完电泳的胶放入含有染料的液体中,染胶 10 分钟(如果胶厚适度延长时间)。
8、取出胶,放入扫胶仪中观察结果。
染胶液的配置:180ml dH2O 中加入 20ml 1M NaCl,再加入 10000× Gelred 浓缩液 60ul。
染胶液的使用:配置好的染胶液可以重复使用很多次,直至染胶强度很低再重新配置
产品特点:
1. 安全无毒: 独特的油性大分子特点使其不能穿透细胞膜进入细胞内,艾姆斯氏试验结果也表明该 染料的诱变性远小于 EB。
2. 灵敏度高:适用于各种大小片段的电泳染色,对核酸迁移的影响较小。样品荧光信号强,背景信 号低。
3. 稳定性高:适用于使用微波或其它加热方法制备琼脂糖凝胶;室温下在酸或碱缓冲液中极其稳定, 耐光性强。且不挥发。
4. 操作简单:在预制胶和电泳过程中不降解,可直接用可见光凝胶透射仪观察。
5. 适用范围广:可选择电泳前染色(胶染法)或电泳后染色(泡染法);适用于琼脂糖凝胶或聚丙烯酰 胺凝胶电泳;可用于 dsDNA、ssDNA 或 RNA 染色。
保存条件:
-20℃
UN码:
HazardClass:
危害声明:
安全说明:
搜索质检报告(COA)
参考文献 & 客户发表文献

本计算器可帮助您计算出特定溶液中溶质的质量、溶液浓度和体积之间的关系,公式为:
质量 (g) = 浓度 (mol/L) x 体积 (L) x 分子量 (g/mol)

摩尔浓度计算公式

  • =
    *
    *
    *选择对应的单位 *空出希望得到的变量,填写另外两个变量

用本工具协助配置特定浓度的溶液,使用的计算公式为:
开始浓度 x 开始体积 = 最终浓度 x 最终体积

稀释公式

稀释公式一般简略地表示为:C1V1 = C2V2 ( 输入 输出 )

  • * = *

连续稀释计算器方程

  • 连续稀释

  • 初始浓度:
  • 稀释倍数:
  • 计算结果

  • C1=C0/X C1: LOG(C1):
    C2=C1/X C2: LOG(C2):
    C3=C2/X C3: LOG(C3):
    C4=C3/X C4: LOG(C4):
    C5=C4/X C5: LOG(C5):
    C6=C5/X C6: LOG(C6):
    C7=C6/X C7: LOG(C7):
    C8=C7/X C8: LOG(C8):